В КРОВИ ПО СПОСОБУ САЛИ
Определение содержания гемоглобина в крови производится колориметрическими способами, один из которых (гематиновый метод Сали) основан на образовании устойчивого раствора коричневого цвета при взаимодействии гемоглобина с соляной кислотой. Принцип колориметрического способа заключается в том, что если исследуемый раствор путем разбавления довести до окраски, одинаковой со стандартным раствором, то концентрация растворенных веществ в обоих растворах будет одинакова, а количества веществ будут соотносится как их объемы. В стандартном растворе гемоглобина содержится 167 г/л.
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику определения гемоглобина и найти содержание гемоглобина в исследуемой крови.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м ы: гемометр Сали, капилляр с меткой 0,02 мл, 0,1 н раствор соляной кислоты, дистиллированная вода, свежая кровь, пипетка, стеклянная палочка, стерильная инъекционная игла, вата, спирт, йод, эфир, стерильный скарификатор. Объект исследования - человек.
Х о д р а б о т ы
В среднюю пробирку гемометра налить 0,1 н раствор соляной кислоты до нижней кольцевой метки. Из пальца обычным способом набрать в капилляр кровь без пузырьков до метки. Излишек крови можно удалить из капилляра прикладыванием ваты или фильтровальной бумаги к кончику капилляра. Выдуть кровь на дно пробирки из капилляра так, чтобы верхний слой кислоты остался неокрашенным. Не вынимая капилляр, промыть его раствором соляной кислоты из верхнего слоя пробирки гемометра. После этого содержимое пробирки перемешать стеклянной палочкой и поставить в гемометр на 5-10 мин. Это время необходимо для полного превращения гемоглобина в солянокислый гематин
Затем к содержимому пробирки прибавить по каплям дистиллированную воду, каждый раз перемешивая раствор стеклянной палочкой до тех пор, пока цвет полученного раствора не станет одинаковым с цветом стандартного раствора боковых ампул гемометра. Цифра, стоящая на уровне нижней границы мениска полученного раствора отражает содержание гемоглобина в исследуемой крови в грамм-процентах (г%).
Перевод полученных данных в единицы системы СИ (в г/л) производят путем умножения измеренного количества гемоглобина в г% на 10. Зарисовать гемометр и капилляр.
В выводе сравнить с нормой полученное содержание гемоглобина в исследуемой крови.
4) ПОДСЧЕТ КОЛИЧЕСТВА ЭРИТРОЦИТОВ
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику и определить количество эритроцитов в исследуемой крови.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м ы: микроскоп, счетная камера Горяева, меланжер для эритроцитов, 3 % раствор хлорида натрия, покровные стекла, регулируемая пипетка, пробирки, стерильный скарификатор, вата, спирт, эфир, йод. Объект исследования - человек.
Х о д р а б о т ы
Необходимо перед началом работы рассмотреть счетную камеру под микроскопом, найти малые квадратики и большие квадраты сетки (рис.1). Камеру предварительно необходимо подготовить путем притирания покровного стеклышка к боковым выступающим граням камеры до появления цветных (ньютоновских) колец. В каплю свежей крови, полученной из пальца, погрузить кончик меланжера (с красной бусинкой в расширении) для эритроцитов и набрать кровь до метки 0,5, следя, чтобы в капилляр не
попали пузырьки воздуха. Быстро, пока кровь не свернулась, перенести кончик меланжера в 3 % раствор хлорида натрия и набрать его до метки 101, т.е. развести кровь в 200 раз. После этого взять заполненный меланжер (смеситель), зажать его концы 1 и 3 пальцами и в течение 1 мин встряхи-
вать. После тщательного перемешивания крови, удалив предварительно 1-2 капли, нанести небольшую капельку на сетку камеры.
При необходимости такое же разведение может быть выполнено другим способом. Например, 0,02 мл крови смешать с 4 мл 3 % NaCl в пробирке. Содержимое пробирки в этом случае тщательно перемешивается.
Если капля разведенной крови будет слишком велика, то жидкость может попасть на боковые грани камеры и высота слоя над сеткой будет больше 0,1 мм. В этом случае камеру следует промыть дистиллированной водой, насухо вытереть и заполнить снова. Разведенную (в меланжере) кровь следует еще раз перемешать.
Заполнив камеру, поместить ее под микроскоп и, если форменные элементы расположены равномерно (что является показателем хорошего перемешивания крови), приступить к подсчету. Считать эритроциты удобнее при большом увеличении.
Необходимо подсчитать число эритроцитов в 5 больших квадратах, расположенных в разных местах сетки, например, по диагонали. Во избежание двухкратного подсчета клеток, лежащих на границе между малыми квадратиками, руководствоваться правилом Егорова, согласно которому, относящимися к данному квадратику считаются эритроциты, лежащие как внутри квадратика, так и на его левой и верхней границе. Эритроциты, лежащие на правой и нижней границе для данного квадратика не учитываются.
Формула для вычисления количества эритроцитов в 1 мм3 крови:
А х 4000 х 200
N = ————————, где:
N - искомое число эритроцитов;
А - число эритроцитов в 80 маленьких квадратиках (или в 5 больших);
4000 - множитель для получения содержания эритроцитов в одном мм3 крови;
200 - степень разведения эритроцитов.
Для перевода полученного количества эритроцитов в единицы СИ, подсчитанное количество эритроцитов умножить на 106 и выразить в N х 1012 /л (тера на литр). Зарисовать фрагмент сетки камеры Горяева с маленькими и большими квадратами.
В выводе сравнить количество подсчитанных эритроцитов с нормой.
5) ОПРЕДЕЛЕНИЕ ЦВЕТОВОГО ПОКАЗАТЕЛЯ КРОВИ
Цветовой показатель (ЦП) отражает насыщенность эритроцитов гемоглобином.
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику и рассчитать ЦП крови.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м ы: данные количества эритроцитов и содержания гемоглобина в крови.
Х о д р а б о т ы
У испытуемого определяют количество эритроцитов и гемоглобина в крови. Расчет цветового показателя производят по формуле:
Hb г/л х 3
ЦП = —————— где:
А
А - число эритроцитов в 1 мкл (первые три цифры).
ЦП можно определить по номограмме. Сравнить его с нормой.
6) ПОДСЧЕТ КОЛИЧЕСТВА ЛЕЙКОЦИТОВ
Лейкоциты представляют собой клеточные элементы, непосредственно участвующие в иммунозащитных реакциях. Они в отличие от эритроцитов содержат ядра и обладают способностью выходить из кровеносного русла и самостоятельно передвигаться.
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику и определить количество лейкоцитов в исследуемой крови.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м ы: микроскоп, счетная камера Горяева, меланжер для подсчета лейкоцитов, 5 % раствор уксусной кислоты с метиленовой синью, покровные стекла, регулируемая пипетка, пробирки, вата, спирт, йод, эфир, стерильный скарификатор. Объект исследования - человек.
Х о д р а б о т ы
Камеру Горяева предварительно подготовить путем притирания покровного стеклышка к боковым выступающим граням камеры до появления цветных (ньютоновских) колец. В каплю свежей крови погрузить кончик меланжера (смесителя) для лейкоцитов с белой бусинкой в расширении (см. рис.1) и набрать кровь до метки 0,5 без пузырьков и быстро, пока кровь не свернулась, перенести кончик меланжера в раствор уксусной кислоты, подкрашенной метиленовой синью. Раствор уксусной кислоты набрать до метки 11, при этом кровь разводится в 20 раз. После этого взять заполненный меланжер, зажать его концы 1 и 3 пальцами, и в течении 1 мин его встряхивать. После тщательного перемешивания крови, удалив предварительно 1-2 капли, нанести небольшую капельку на сетку камеры.Если капля слишком велика, то жидкость может попасть на боковые грани камеры и высота слоя над сеткой будет больше 0,1 мм, дальнейшие расчеты будут ошибочны. В этом случае камеру следует промыть дистиллированной водой, насухо вытереть и заполнить снова. Разведенную в меланжере кровь следует еще раз перемешать.
При необходимости разведение такой степени может быть выполнено другим способом, например, смешиванием 0,1 мл крови с 2,0 мл 5 % уксусной кислоты в пробирке. Содержимое пробирки в этом случае следует тщательно перемешать.
Заполнив камеру, поместить ее под микроскоп и приступить к подсчету. Лейкоциты удобнее считать при малом увеличении. Подсчет производить в 25 больших квадратах, что составляет 400 маленьких квадратиков. При подсчете пользоваться правилом Егорова:
лейкоциты, лежащие на правой и нижней границах (линиях) данного квадрата не учитываются.
Формула для вычисления количества лейкоцитов в 1 мм3 крови:
В х 4000 х 20
N = —————— где:
N - искомое число лейкоцитов;
В - число лейкоцитов в 25 больших (400 малых) квадратах;
4000 - множитель для получения содержания лейкоцитов в 1 мкл крови;
400 - число маленьких квадратиков в 25 больших квадратах;
20 - степень разведения крови.
Для перевода количества лейкоцитов в единицы СИ, полученную величину умножить на 106 и выразить в N х 109 (гига на литр).
Сравнить найденное количество лейкоцитов в крови испытуемого с нормой.
7) ОПРЕДЕЛЕНИЕ ГРУППЫКРОВИ
Групповая принадлежность крови определяется содержанием агглютиногенов (А и В) в эритроцитах и агглютининов (a и b) в плазме крови.
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику определения группы крови и определить групповую принадлежность крови испытуемого.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м ы: предметное стекло, стеклянные палочки, стандартные сыворотки I, II, III групп, вата, спирт, йод, эфир, стерильный скарификатор. Объект исследования - человек.
Х о д р а б о т ы
Предметное стекло поместить на белую бумагу и нанести (не смешивая) по капле стандартной сыворотки I, II и III групп. Рядом с каплями стандартных сывороток поместить на предметное стекло небольшие капельки полученной из пальца крови (примерно 1/3 от капли сыворотки). Тщательно размешать, соединив чистой сухой щтдельной стеклянной палочкой капли крови и сыворотки, пока смесь не примет равномерного розового цвета.
Реакция агглютинации наступит через 1-5 мин. При наличии агглютинации капля становится прозрачной, а эритроциты склеиваются в виде комочков.
1. Отсутствие агглютинации в каждой из трех смешанных капель совороток позволяет отнести исследуемую кровь к 0(I) группе.
2. Если агглютинация произошла в каплях сывороток I и III групп, то исследуемая кровь принадлежит к A(II) группе.
3. Если агглютинация произошла в каплях сывороток I и II групп, то исследуемую кровь принадлежит к B(III) группе.
4. При наличии агглютинации в каплях сывороток I, II и III групп, то исследуемая кровь принадлежит к AB (IY) группе.
Отметить групповую принадлежность исследуемой крови.
8) ОПРЕДЕЛЕНИЕ РЕЗУС-ФАКТОРА (Rh) КРОВИ
В эритроцитах 85 % людей, кроме агглютиногенов А и В, содержится особый антиген, называемый резус-фактором (Rh). При переливании резусположительной крови резусотрицательному реципиенту, у последнего на резус-фактор вырабатываются антитела, которые при повторном вливании резусположительной крови вызовут агглютинацию эритроцитов донора, приводящую к патологическому состоянию.
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику определения резус- фактора и определить резус-принадлежность исследуемой крови.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м ы: стандартная антирезус-сыворотка и контрольная сыворотка (не содержащая антирезус антител), предметное стекло, стеклянная палочка, свежая кровь, вата, спирт, йод, эфир, стерильный скарификатор. Объект исследования - человек.
Х о д р а б о т ы
На предметное стекло нанести одну каплю стандартной антирезус-сыворотки с одной стороны (например справа), и с другой стороны стекла - каплю контрольной сыворотки (при наличии ее). На стекло рядом с каждой сывороткой поместить по одной капле исследуемой крови (размер капли должен быть вдвое меньше, чем капля сыворотки). Затем чистой сухой стеклянной палочкой перемешать каплю крови с каплей стандартной антирезус- сыворотки, образуя общую каплю. Подобным образом чистой сухой стеклянной палочкой перемешать кровь со стандартной сывороткой. Наблюдать за реакцией, покачивая предметное стекло с каплями. Для лучшего выявления агглютинации или ее отсутствия можно добавить в обе пробы по капле физиологического раствора. При наличии агглютинации эритроциты склеиваются в виде комочков.
Если исследуемая кровь резус-положительна, то в пробе со стандартной антирезус сывороткой будет наблюдаться агглютинация эритроцитов (в контроле ее быть не должно). Если кровь резус-отрицательная, агглютинация отсутствует в обеих пробах (при возникновении агглютинации в пробе с контрольной сывороткой определение следует повторить, либо проводить другим методом).
В выводе отметить Rh-принадлежность испытуемой крови.
9) ОПРЕДЕЛЕНИЕ АРТЕРИАЛЬНОГО ПУЛЬСА
Артериальный пульс легко прощупывается на артериях, расположенных поверхностно, в практике - чаще всего на лучевой. Регистрацию пульса производят при помощи сфигмографа (рис. 8).
А. Исследование свойств артериального пульса методом пальпации.
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику и оценить свойства пульса методом пальпации.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м секудомер. Объект исследования - человек.
Х о д р а б о т ы
Кисть обследуемого обхватить правой рукой в области лучезапястного сустава так, чтобы первый палец располагался на наружной стороне предплечья, а остальные - на внутренней его поверхности. Определив лучевую артерию, необходимо тремя пальцами слегка прижать ее к подлежащей кости до появления ощущения под пальцами пульсовых толчков. Оценить пульс по следующим показателям:
1. Частота пульса. Подсчитать количество пульсовых толчков в течение минуты (достаточно провести счет в течение 15-20 с и сделать расчет на мин).
2. Ритм пульса. Определить его по сопоставлению длительности интервалов между пульсовыми ударами.
3. Наполнение(амплитуда) пульса. Определить по высоте подъема артериальной стенки и ощущаемому увеличению объема артерии под пальцами во время систолы сердца.
4. Напряжение пульса. Определить его по той силе, которую нужно приложить при надавливании на артерию, чтобы пульсация ее исчезла под пальцами, расположенными дистальнее места прижатия.
5. Быстрота (скорость) пульса. Определить ее по скорости подъема и спадения артериальной стенки.
Результаты обследования испытуемого записать в таблицу.
Б. Измерение частоты пульса при помощи пульсотахометра
экспресс-диагностического прибора "Барьер"
Ц е л ь р а б о т ы: ознакомиться с методикой определения частоты пульса при помощи пульсотахометра.
Х о д р а б о т ы
1.Подключить датчик пульсотахометра к прибору.
2.Усадить испытуемого перед прибором. Расслабленную руку, полусогнутую в локте, разместить в удобном положении на столе и расположить датчик на среднем пальце.
3.Начать измерение нажатием кнопки "ЧП".
Сравнить данные, полученные различными способами исследования пульса.
10) ИЗМЕРЕНИЕ АРТЕРИАЛЬНОГО ДАВЛЕНИЯ У ЧЕЛОВЕКА
А. Пальпаторный метод Рива-Роччи
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику определения артериального давления по способу Рива-Роччи.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м тонометр. Объект исследования - человек.
Х о д р а б о т ы
Метод позволяет определить только максимальное (систолическое) давление. Манжету наложить на плечо. Рука обследуемого должна при этом находиться на столе в удобном положении. В манжете создается давление до прекращения пульсации лучевой артерии. Затем снижая давление в манжете, отметить показания манометра в момент появления пульса. Эти показания соответствуют максимальному (систолическому) давлению в лучевой артерии.
Б. Аускультативный метод Н.С.Короткова
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику определения артериального давления по Н.С.Короткову и определить его величину у испытуемого.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м ы: тонометр,фонендоскоп. Объект исследования - человек.
Х о д р а б о т ы
Этим методом можно измерить как систолическое, так и диастолическое давление. Сидя на стуле, испытуемый кладет расслабленную руку на стол, повыше на обнаженное плечо ему накладывают манжету так, чтобы она плотно охватывала плечо, но не сдавливала ткани. Нижний край манжеты должен отстоять от локтевого сгиба не меньше чем на полтора сантиметра. В локтевой ямке необходимо найти пульсирующую плечевую артерию, над которой разместить головку фонендоскопа (рис.9). Нагнетая воздух в манжету, в ней создают давление выше ожидаемого систолического на 20-25 мм рт.ст. Выпуская воздух из манжеты, фонендоскопом выслушивают тоны (тоны Короткова) в плечевой артерии. Момент появления тонов соответствует систолическому давлению. Продолжая снижать давление в манжете, выслушивают нарастающую силу тонов, которые затем ослабевают и исчезают. Момент исчезновения тонов соответствует диастолическому давлению.
11) ЭЛЕКТРОКАРДИОГРАФИЯ
Электрокардиография - метод регистрации электрических явлений, возникающих в сердце во время сердечного цикла. Электрический потенциал, генерируемый сердечной мышцей, можно зарегистрировать от поверхности тела. Электрокардиограмма (ЭКГ) обычно состоит из трех направленных вверх положительных зубцов P, R, T, и двух направленных вниз отрицательных зубцов Q, S. В ней различают пять интервалов:
P-Q, QRS, S-T, Q-T, R-R. Зубец Р - предсердный комплекс ЭКГ; он является алгебраической суммой потенциалов, возникающих в правом и левом предсердиях при их возбуждении. QRST - желудочковые потенциалы, они отражают процессы возбуждения желудочков (рис.6). О состоянии сердца судят по амплитуде зубцов (измеряется от изолинии до вершины) и длительности интервалов.
При электрокардиографии используется метод биполярных и униполярных отведений. Для проведения данной работы применяются три стандартных биполярных отведения, при которых регистрируется разность потенциалов между конечностями - от правой и левой руки (I отведение), правой руки и левой ноги (II отведение), левой руки и левой ноги (III отведение) (рис.7).
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику, произвести запись и дать характеристику ЭКГ.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м ы: электрокардиограф ЭК1ТЦ-01, электроды, электродная паста или 1,0 % раствор NaCl, марля или фильтровальная бумага, клей, спирт-эфир. Объект исследования - человек.
Х о д р а б о т ы
А. Наложение электродов. Пациента уложить на кушетку. Обработать спиртом электроды и участки тела в местах наложения электродов. Смазать электроды электропроводящей пастой или смочить прокладки 1,0 % раствором NaCl. Наложить электроды согласно схеме: красный - правая рука, желтый - левая рука, зеленый - левая нога, черный - индифферентный, накладывается на правую ногу.
Б. Запись ЭКГ.
1. Включить прибор в сеть нажатием на стабилизаторе зеленой кнопки "сеть". Включить кардиограф нажатием желтой кнопки "Вкл". На экране высвечиваются характеристики режима работы прибора.
2. Установить ручной режим работы - кнопкой "Авт/руч", калибровку 1 мВ = 10 мм с помощью кнопки "п ", скорость движения ленты 25 мм/с - кнопкой "мм/мВ".
3. Запись ЭКГ осуществляется нажатием на кнопку "Старт-стоп". Стандартные отведения последовательно включаются нажатием кнопки " > ".
ЭКГ, зарегистрированную на всех отведениях, вклеить в протокол опыта.
1. Отметить зубцы и интервалы соответствующими обозначениями.
2. Определить частоту сокращений и ритм сердца - по длительности интервалов R-R. Сравнить с нормой.
3. Измерить амплитуду зубцов P, Q, R, S, T.
4. Измерить длительность зубцов и интервалов определив цену 1 мм, (с учетом 1 мм = 0,04 с, исходя из скорости движения ленты 25 мм/с).
На основании проведенного анализа ЭКГ в выводе охарактеризовать функциональное состояние сердца испытуемого.
12) СПИРОМЕТРИЯ
Спирометрия - метод определения жизненной емкости легких и составляющих ее объемов.
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику и определить жизненную емкость легких (ЖЕЛ) и составляющие ее объемы.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м ы: водяной или сухой спирометр, носовой зажим, спирт, вата. Объект исследования - человек.
Х о д р а б о т ы
Мундштук спирометра протереть ватой, смоченной спиртом. Испытуемому после максимального вдоха в положении стоя сделать максимально глубокий выдох в спирометр (рис.11), по шкале спирометра определить ЖЕЛ. Измерение ЖЕЛ провести несколько раз и вычислить среднее значение.
Определить ЖЕЛ в положении испытуемого лежа, а также после физической нагрузки (20 приседаний).
Выдохнуть несколько (5-7) раз при обычном режиме дыхания в покое в спирометр (обычный вдох осуществлять из атмосферного воздуха).Разделив показания спирометра на число выдохов, сделанных в спирометр, определить дыхательный объем воздуха.
Для определения резервного объема выдоха сделать после очередного спокойного выдоха максимальный выдох в спирометр. Повторить измерения несколько раз и вычислить среднее.
При измерении резервного объема вдоха необходимо в водяной спирометр набрать 5 л воздуха (поднять рукой колокол) и сделать максимальный вдох из спирометра. Разность между первоначальным объемом воздуха в спирометре и объемом, оставшимся там после глубокого вдоха, соответствует резервному объему вдоха. Для вычисления другим - расчетным способом резервного объема вдоха необходимо из величины ЖЕЛ вычесть сумму дыхательного объема и резервного объема выдоха.
Для определения остаточного объема воздуха используют косвенные методы. В норме остаточный объем составляет 25-30 % от величины ЖЕЛ.
По номограмме (рис.12) рассчитать должную ЖЕЛ (ДЖЕЛ), в выводе сравнить с полученными показателями ЖЕЛ (стоя, лежа, после физической нагрузки).
Проба Вотчала. В норме разность между величинами ЖЕЛ, измеренными при обычной скорости выдоха и при максимально быстром выдохе, не превышает 300 мл. Увеличение этой разности свидетельствует о сужении (обструкции) мелких бронхов.
Записать ЖЕЛ, ФЖЕЛ,ДЖЕЛ, показатель пробы Вотчала и сравнить результаты с нормой.
13) СПИРОГРАФИЯ
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику графической регистрации показателей внешнего дыхания.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м ы: спирограф "Метатест-1", продезинфицированные носовой зажим и загубник. Объект исследования - человек.
Х о д р а б о т ы
1. Подготовить прибор к работе. Шланги, предварительно продезинфицированные, тройник и загубник подсоединить к прибору.
2. Проверить систему воздухом путем открытия тройника прибора и совершения нескольких циклов возвратно-поступательного движения сильфона.
3. Установить штангу в положение удобное для испытуемого.
Присоединить прибор к испытуемому через загубник, наложить носовой зажим и дать привыкнуть к дыханию через загубник в атмосферу. Включить прибор в сеть.
4. После открытия тройника (дыхание теперь осуществляется в спирограф) и нажатия кнопки "50" (мм/мин) регистрируют спирограмму (рис.13) при выполнении испытуемым различных дыхательных движений (по требованию исследователя).
На спирограмме определить: а) дыхательный объем (ДО); б) резервный объем вдоха (РОвд); в) резервный объем выдоха (РОвыд); г) жизненную емкость легких (ЖЕЛ); д) минутный объем дыхания (МОД); е) время максимальной задержки на вдохе и выдохе.
Дыхательный объем записывается при спокойном дыхании. Для определения РОвд сделать запись глубокого вдоха после спокойного вдоха. Повторив запись спокойного дыхания, после обычного выдоха следует сделать глубокий выдох до конца и записать РОвыд.
Для определения ЖЕЛ испытуемый должен произвести самый глубокий вдох, а затем глубокий выдох. Произвести запись максимальной задержки дыхания на вдохе и на выдохе. По окончании записи нажать кнопку "стоп".
После завершения записи легочных объемов произвести запись спирограммы нажав кнопку "1200" (мм/мин), и рассчитать следующие показатели:
1) Длительность спокойного вдоха и выдоха (t вд и t выд); по полученным данным с учетом ДО - рассчитать минутный объем дыхания (МОД);
2) Объем форсированного выдоха ОФВ (измерить объем глубокого и быстрого выдоха за 1 сек.);
3) Форсированную жизненную емкость легких - ФЖЕЛ1 (рассчитать по последующей пробе- МВЛ);
4) Максимальную вентиляцию легких МВЛ (дыхание с максимальной частотой и амплитудой, записать 3-4 цикла).
Рассчитать все объемы легких, исходя из того, что 1 мм записи соответствует 40 мл воздуха (чувствительность прибора 25 мм/л). Временные характеристики параметров дыхания рассчитать, учитывая скорость движения ленты 50 мм/мин (1 мм=1,2 сек) и 1200 мм/мин (1 мм=0,05 сек).
Спирограмму вклеить в тетрадь, полученные результаты записать в таблицу.
При анализе результатов, использовать относительное значение ОФВ, в % от ФЖЕЛ. У лиц в возрасте до 50 лет со здоровыми легкими относительный ОФВ1 равен 70-80 % от ФЖЕЛ. С возрастом он снижается. При обструктивных нарушениях выдох вследствие повышения аэродинамического сопротивления удлиняется и ОФВ снижается.
Сделать вывод о состоянии внешнего дыхания испытуемого.
14) РАСЧЕТ ОСНОВНОГО ОБМЕНА ПО ТАБЛИЦАМ
ГАРРИСА-БЕНЕДИКТА
Расход энергии в состоянии мышечного покоя, натощак и при температуре 18 0С (зона температурного комфорта) соответствует основному обмену. Он отражает минимальный уровень расхода энергии для поддержания жизнедеятельности всех систем организма. Величина основного обмена зависит от возраста, пола, массы и длины тела. С учетом указанных факторов уровень основного обмена рассчитывается по специальным таблицам.
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику определения основного обмена по таблицам и определить его величину у испытуемого.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м ы: ростомер, весы, таблицы для определения основного обмена. Объект исследования - человек.
Х о д р а б о т ы
С помощью весов определяют массу тела испытуемого и при помощи ростомера измерить его длину. Для расчета основного обмена используют таблицы Гарриса-Бенедикта с учетом пола испытуемого, в связи с тем, что уровень основного обмена у мужчин в среднем на 10 % выше, чем у женщин.
Например, испытуемый мужчина в возрасте 27 лет, длиной тела 160 см, массой 74 кг.
Таблица состоит из двух частей- А и Б. В таблице А необходимо найти массу испытуемого и рядом число 1084. В таблице Б по горизонтали найти возраст (27 лет), а по вертикали длину тела (160 см). На пересечении граф возраста и длины тела находится цифра 618. Суммируя оба найденных числа, получают 1084 + 618 =1702 ккал. Используя коэффициент перерасчета, выражают результат в килоджоулях (1702 х 4,1868 = 7125,93 кДж).
В выводе отметить найденную по таблице величину "должного" основного обмена испытуемого.
15) ДИНАМОМЕТРИЯ. ИЗМЕРЕНИЕ СИЛОВЫХ
КАЧЕСТВ ЧЕЛОВЕКА
Одним из показателей физического развития организма является сила мышц. Оценку силовых качеств человека осуществляют методом динамометрии (кистевой и становой), позволяющей определить максимальную мышечную силу, показатель силы, уровень работоспособности мышц и показатель ее снижения.
А. Кистевая динамометрия
Ц е л ь р а б о т ы: освоить методику кистевой динамометрии. Определить силу мышц кисти, показатель силы, уровень работоспособности мышц и показатель ее снижения у испытуемого.
Д л я р а б о т ы н е о б х о д и м ы: кистевой динамометр, секундомер. Объект исследования человек.
Х о д р а б о т ы
а) Определение максимальной силы мышц.
Испытуемый берет динамометр в правую руку, отводит ее от туловища под прямым углом. Вторая рука опущена вниз вдоль туловища и расслаблена. Динамометр трижды сжимается с максимальным усилием без рывка, сначала правой, затем левой рукой. Наибольшее отклонение стрелки динамометра будет показателем максимальной силы мышц кисти.
б) Определение показателя силы (ПС).
Данный показатель определяют по формуле:
сила мышц кисти (кг)
ПС = ——————————— х 100
масса тела (кг)
Полученные результаты:
Сила мышц правой руки кг
Показатель силы ед
Сила мышц левой руки кг
Показатель силы ед
Удовлетворительный показатель силы мышц кисти составляет для:
женщин - 50 ед
мужчин - 55 ед
в) Определение уровня работоспособности мышц.
Испытуемый выполняет 10-кратные максимальные усилия вышеуказанным способом с частотой 1 раз в 5 сек. Вычисляется средний уровень работоспособности мышц кисти по формуле:
Р = (f1+ f2 + f3... + fn) / n, где:
Р - уровень работоспособности;
f1, f2 и т.д. - показатели динамометра (кг) при отдельных мышечых усилиях
n - количество попыток.
В выводах оценить силу мышц испытуемого, указать, от чего зависит сила мышц. По результатам 10-кратных усилий вычертить график, который выявит характер снижения работоспособности мышц: на оси абсцисс отложить порядковые номера усилий, на оси ординат - показатели динамометрии при каждом усилии (рис 26). Сравнить результаты нескольких испытуемых.
г) Определение показателя снижения уровня работоспособности.
Определения данного показателя проводится по формуле:
S = [(f1 - fmin)/fmax ] х 100, где;
S - показатель снижения уровня работоспособности;
f1 - величина начального мышечного усилия;
fmin - минимальная величина мышечного усилия;
fmax - максимальная величина мышечного усилия.