Брюшной тиф.была желтая.состав желчь глюкоза и индикатор.




Пешкова среда

Дифференциально-диагностическая полужидкая питательная среда для определения у микроорганизмов подвижности и способности сбраживать маннит; содержит агар, и индикатор бромтимоловый синий. манит

 

Левина среда
мба.лактоза.мител синий

Левина среда (М. Levine; синоним эозин-метиленблау агар) — цветная элективная питательная среда, применяемая для дифференцирования микроорганизмов кишечной группы при микробиологической диагностике кишечных инфекций — брюшного тифа, сальмонеллезов, дизентерии, колиэнтеритов. Стабильна при хранении в течение нескольких дней. Наличие в среде лактозы позволяет выделять патогенную микрофлору, не способную разлагать этот углевод. Входящие в состав среды Левина органические красители задерживают рост сапрофитов, что позволяет использовать среду для непосредственного засева исследуемого материала..
Основная среда: 1) пептон бактериологический — 10 г; 2) агар-агар — 15 г; 3) калий фосфорнокислый двузамещенный (К2НРO4) — 2 в; 4) вода дистиллированная — 1 л. Разливают по 100 мл и стерилизуют при 120° в течение 15—30 мин.
Дифференциальная среда: на каждые 100 мл расплавленной основной среды добавляют при помешивании следующие растворы, приготовленные на дистиллированной воде и простерилизованные дробно текучим паром три дня подряд. Ингредиенты: 1) 20% раствор лактозы— 5 мл; 2) 2% раствор эозина бактериологического — 2 мл; 3) 0,5% раствор метиленового синего — 1,5 мл. Среду разливают в чашки Петри, подсушивает. Готовая среда имеет сине-фиолетовый цвет. При отсутствии пептона среду можно готовить на основе перевара Хоттингера (рН=7,2—7,3). Широкое применение нашла сухая среда Левина, выпускаемая промышленностью.
Патогенные бактерии — возбудители брюшного тифа, сальмонеллезов, дизентерии,— не разлагая лактозы, растут на среде Левина в виде мелких, круглых, прозрачных, чаще бесцветных колоний, иногда с розоватым или голубоватым оттенком. Кишечная палочка образует на Л. с. небольшие гладкие колонии темно-синего цвета. У молодых колоний окраска может наблюдаться только в центре. Протей растет в виде небольших оранжево-желтых колоний, цвет среды вокруг колоний изменяется.
Колонии других бактерий подобной картины не дают.
См. также Дифференциально-диагностические среды, Питательные среды.

Рапопорт — Вайнтрауба среда

Брюшной тиф.была желтая.состав желчь глюкоза и индикатор.

Рапопорт — Вайнтрауба среда (М. А. Рапопорт, А. Вайнтрауб) — элективная жидкая среда, используемая для дифференциации гемокультур бактерий тифопаратифозной группы. Приготовление среды: к 1 л мясопептонного бульона добавляют 100 мл желчи, 20 г глюкозы или маннита и в качестве индикатора кислый фуксин до отчетливо розового цвета. Среду разливают по 50 мл во флаконы емкостью 100 см3 с газоулавливающими трубочками-поплавками диаметром 8—9 мм и длиной 60—70 мм, которые помещают открытым концом вниз. Разлитую среду стерилизуют в автоклаве в течение 20 мин. при t° 112° либо текучим паром 3 дня по 30 мин. Незасеянная простерилизованная среда имеет слегка желтоватый оттенок, а после засева 5—20 мл крови вследствие гемолизирующего действия желчи окрашивается в коричневый цвет. В поплавке же в связи со слабой диффузией среда сохраняет желтоватую окраску.
При росте возбудителя брюшного тифа происходит отчетливое помутнение и вследствие сбраживания глюкозы покраснение среды, что особенно заметно в трубочке-поплавке. При росте паратифозных бактерий помутнение и изменение цвета среды сопровождается накоплением в поплавках пузырьков газа, а также выпадением значительного осадка.
В случае обнаружения роста к исходу первых суток следует провести микроскопическое исследование посевов с определением подвижности выросших бактерий и их отношения к окраске по Граму, что в сочетании с изменением цвета среды и наличием или отсутствием газа в поплавке позволяет составить ориентировочное представление о принадлежности выделенной гемокультуры к возбудителям тифопаратифозных заболеваний. Использование в среде Рапопорта — Вайнтрауба вместо глюкозы маннита в ряде случаев облегчает дифференцирование патогенных тифо-паратифозных бактерий от некоторых встречающихся в виде загрязнения сапрофитов, не ферментирующих данный углевод.
При производстве посевов в среде Рапопорта — Вайнтрауба следует взбалтывать жидкость во флаконе, что обеспечивает более полное дефибринирование крови и препятствует образованию сгустка, закупоривающего поплавок; при этом необходимо избегать попадания в поплавок пузырьков воздуха. Последнее может ввести в заблуждение при учете результатов.
См. также Дифференциально-диагностические среди.

ПИТАТЕЛЬНАЯ СРЕДА ДЛЯ ВЫДЕЛЕНИЯ ДИФТЕРИЙНОГО МИКРОБА, содержащая питательную основу, хлористый натрий, агар, теллурит калия и воду, отличающаяся тем, что в качестве основы она содержит панкреатический гидролизат рыбной муки и дополнительно ферментативный гидролизат черного альбумина при следующем соотношении компонентов:
Панкреатический гидролизат рыбной муки, г 20 25

 

Кита –тароции

Аня мпб + о.5% р р глю. вазелиновое масло, фарш
для определения анаэробов

 

А разрыв сахрного агара

 

 

Олег а агар сывороточно-тилуритовый?

Кровь.тиур.коринобактерии дифтерии.требовальны к среде.тилур подавляет другие органимы

 

 

Метод по вейнебергу и цейслеру

 

Метод истощения

.сахарно-кровяной агар

 



Поделиться:




Поиск по сайту

©2015-2024 poisk-ru.ru
Все права принадлежать их авторам. Данный сайт не претендует на авторства, а предоставляет бесплатное использование.
Дата создания страницы: 2017-12-12 Нарушение авторских прав и Нарушение персональных данных


Поиск по сайту: