Фосфофрукто-2-киназы / фруктозо-2,6-bisphos-




Phatase 4. PFKFB4 является членом семьи

бифункциональная 6-фосфофрукто-2-киназа: фруктоза-

Ферменты 2,6-бифосфатазы, которые катализируют оба

синтез и деградация фруктозы-2,6-

бисфосфат с использованием независимых каталитических доменов.

PFKFB4 использует свою киназную активность для синтеза фруктозы

2,6-бисфосфат из фруктозо-6-фосфата и АТФ

и его фосфатазная активность для гидролиза фруктозы-

2,6-бисфосфат в фруктозо-6-фосфат и

неорганический фосфат 81. Основанная на киноме РНК-

скрининг определил, что PFKFB4 требуется для

активация стероидного рецептора ко-активатор белка 3

(SRC3; также известный как NCOA3), который регулирует ER.

SRC3 является ко-активатором транскрипции, который содержит несколько

Домены, взаимодействующие с рецептором ядра, и внутренние

НАТ деятельность. Следует отметить, что PFKFB4 функционирует как белок

киназа и фосфорилирует SRC3 на S857. Это фос-

Форилирование увеличивает взаимодействие между SRC3

и транскрипционный фактор ATF4 на промоторах гена

увеличить экспрессию генов метаболических ферментов, таких как

в качестве транскетолазы - AMP-деаминаза 1 (AMPD1) и ксан-

тин-дегидрогеназа / оксидаза (XDH), тем самым стимулируя

поток глюкозы в направлении пентозофосфатного пути

и синтез пурина. Экспрессия SRC3-S857A

мутантный рост опухоли молочной железы и метастазирование легкого

Tasis у мышей. Кроме того, PFKFB4 и фосфорил-

повышенные уровни SRC3 повышаются в ER-позитивных опухолях,

и их выражение коррелирует с плохой выживаемостью

пациенты с основным подтипом рака молочной железы 81,

Эти результаты показывают, что PFKFB4, как другой

пример гликолитического фермента, кроме PKM2, действует

в качестве протеинкиназы для регуляции экспрессии генов, и

тем самым рост опухоли путем прямого фосфорилирования

ко-активатор транскрипции SRC3.

Комплекс α-кетоглутаратдегидрогеназы. гистон

сукцинилирование лизина - недавно идентифицированный гистон

часто встречающееся ацилирование 82, 83. Однако

механизм, лежащий в основе гистона лизина сукцинил-

и его функциональные последствия неизвестны.

Недавнее сообщение продемонстрировало, что сукцинилирование гистонов

регулируется комплексом α-KGDH, который

в составе 2-оксоглутаратдегидрогеназы, митохон-

дриал (OGDH), дигидролипоамид сукцинилтрансфераза

компонент комплекса 2-оксоглутаратдегидрогеназы

(DLST) и дигидролипоамиддегидрогеназа (DLD)

и известно, что катализирует превращение α-KG в

сукцинил-КоА в митохондриях 84, При глиобластоме

клетки, часть α-KGDH распределяется в ядре

таким образом, который требует присутствия NLS в

DLST. В ядре α-KGDH взаимодействует с

тона ацетилтрансферазы KAT2A на промоторах гена и

локально поставляет сукцинил-КоА, который затем связывается

КАТ2А с высоким сродством. Кристаллическая структура

каталитического домена KAT2A в комплексе с

сукцинил-КоА демонстрирует, что сукцинил-КоА связывает

до глубокой расщелины KAT2A с сукцинильной частью

указывая на конец гибкой петли 3, которая

принимает различные структурные конформации в сукцинил-

Связанные с КоА формы против связанных с ацетил-КоА форм. Y645 в

эта петля образует водородные связи с сукцинил-КоА

и играет важную роль в избирательном связывании

КАТ2А в сукцинил-КоА над ацетил-КоА. Высота

аффинность связывания сукцинил-КоА для KAT2A и

высокая концентрация локального сукцинил-КоА

с помощью KAT2A-ассоциированного комплекса α-KGDH облегчают

сукцинилирование гистонов на K79 в промоторных областях

более 7000 генов, несмотря на низкую концентрацию

сукцинил-КоА в ядре. Ингибирование ядерной

вход комплекса α- KGDH или экспрессия

Мутант KAT2A с низкой аффинностью связывания с сукцинил-

CoA (KAT2AY645A) снижает экспрессию генов и

ингибирует пролиферацию опухолевых клеток и рост глиомы в

мыши 84. Эти результаты показали, что местное поколение

сукцинил-КоА с помощью ядерного комплекса α-KGDH

с сукцинилтрансферазной активностью KAT2A (рис. 1)

играет инструментальную роль в сукцинилировании гистонов, которое

оказывает большое влияние на экспрессию генов, особенно в

контекст рака, способствующий пролиферации опухолевых клеток

и развитие опухоли.

Фумаразы. Фумараза катализирует обратимую гидратацию

и обезвоживание фумарата до малата в ТСА

цикл, чтобы облегчить переходный этап в производстве

энергии в виде редуцированной НАД (NADH). В

цитозоль, фумараза метаболизирует фумарат, который

побочный продукт цикла мочевины и аминокислоты

olism85, Фумараза транслоцируется из цитозоля в

ядро при ионизирующем излучении ДНК

повреждение 86, В ядре ДНКа-зависимая протеинкиназа

(ДНК-ПК) фосфорилирует фумаразу и способствует

его связывание с гистона H2A.Z. Это приводит к обогащению

фумаразы при индуцированном облучением двухцепочечном

разделить регионы и последующий локализованный фумарат

производство. Местно накапливаемый ингибитор фумарата

его α-KG-зависимая лизин-специфическая деметилаза 2B

(KDM2B) активность гистон-деметилазы и увеличивает

диметилирование гистона H3K36 и накопление

комплекс ДНК-ПК в областях повреждения ДНК для

последовательный негомологичный конец ДНК (NHEJ) восстановление ДНК

и выживание клеток85 (рис. 2б). Процент дефицита фумаразы

частички онкогенеза частично вследствие нарушения

Ремонт ДНК и накопление мутаций 86, биаллельной

инактивация гена FH, приводящая к накоплению

фумарат, вызывает наследственный лейомиоматоз и

карцинома почек. Накопленный фумарат также

усиливает экспрессию генов, участвующих в

Дант ответ, вызывая сукцинилирование Кельч, как

ECH-ассоциированный белок 1 (KEAP1). Это сукцинил

действие отменяет способность KEAP1 подавлять NRF2

(ядерный фактор, связанный с эритроидным фактором 2), который

активирует NRF2-опосредованный антиоксидантный ответ

путь87, 88. Эти исследования подчеркивают инструментальную

роль фумаразы в содействии восстановлению облучения

индуцированное повреждение ДНК и в регуляции антиоксиданта

ответ, которые процессы часто нерегулируемые

во время онкогенеза.

Хроматин-ассоциированная фумараза также напрямую

участвует в транскрипции генов. Под глюкозой

депривация, фумараза фосфорилируется с помощью AMP-

активированная протеинкиназа (AMPK) на S75. Фос-

Форилированная фумараза связывается с фактором транскрипции

ATF2 и транслоцируется в регулируемый ATF2 ген

мотер регионов. Там, фумараз-катализируемый фумарат

ингибирует лизин-специфическую деметилазу 2А (KDM2A),

тем самым способствуя гистону H3K36me2 и экспрессии

генов, опосредующих остановку роста клеток 89, В отличие от

в условиях, достаточных для глюкозы, S75 фума-

R O является O - GlcNAcylated с помощью OGT, что приводит к

экспрессия гена, регулируемого ATF2. Уровни

O - GlcNAcylation фумаразы выше в пан-

клетки рака кишечника, чем у поджелудочной железы здорового человека

эпителиальные клетки протоков желудка и, в значительной степени, эти

опухолевые клетки проявляют устойчивость к депривации глюкозы-

индуцированное увеличение фосфорилирования фумаразы.

Последовательно уровни фумаразы S75 фосфорила-

Эти показатели обратно коррелируют с уровнями экспрессии OGT.

и с плохим прогнозом у пациентов с поджелудочной железой

рак 89. Эти результаты обнаружили инструментальный

Механизм, лежащий в основе регуляции транскрипции

фумараза и связь между нарушением активности OGT

и преимущество роста раковых клеток, подверженных

дефицит глюкозы.

Фруктоза-1,6-бисфосфатаза 1. FBP1 катализирует

гидролиз фруктозы 1,6-бисфосфата до фруктозы

6-фосфат в присутствии двухвалентных катионов, действующих

как ограничивающий скорость фермент в глюконеогенезе 90. Сковорода-

метаболическое профилирование и анализ метаболического генного набора

показали, что истощение FBP1 в результате потери

Локусы FBP1 на хромосоме 9q22 встречаются равномерно

в 600 случаях светлоклеточной почечно-клеточной карциномы (ccRCC),

самая распространенная форма рака почки, но не

встречаются в нормальной почечной ткани, и этот низкий FBP1

экспрессия сильно коррелирует с запущенной опухолью

стадия и плохой прогноз 90. Как супрессор опухолей,

FBP1 ингибирует гликолитический поток в зависимости от его каталитического

активность, тем самым ограничивая энергоснабжение и рост клеток.

Примечательно, что в клетках ccRCC с мутацией фон Гиппеля- Линдау

в более чем 90% случаев ccRCC, FBP1

также присутствует в ядре и ингибирует ядерный

функция HIF1α и HIF2α (также известный как EPAS1)

через прямое взаимодействие HIF с HIF-ингибирующим

домен FBP1. Это торможение приводит к дальнейшему

ингибирование гликолиза, пентозофосфатного пути

и последующей клеточной пролиферации. Эти эффекты происходят

способом, независимым от каталитической активности FBP1 90,

Таким образом, FBP1 проявляет двойную опухоль-супрессивную функцию

в ccRCC через ферментативные и неферментативные

деятельность, причем последняя зависит от ядерной

локализация FBP1.



Поделиться:




Поиск по сайту

©2015-2024 poisk-ru.ru
Все права принадлежать их авторам. Данный сайт не претендует на авторства, а предоставляет бесплатное использование.
Дата создания страницы: 2019-12-28 Нарушение авторских прав и Нарушение персональных данных


Поиск по сайту: