Определите патгис изменения в миокарде крс характерные для лейкоза и определите клет инфильтрацию органа.отдельно

Отдельно

20.определение влажности меда рефрактометром. основан на изменении рефракции (преломляемости) световых лучей в зависимости от содержания и соотношения сухих веществ и воды в меде. Мед с влажностью до 21% имеет показатель рефракции не ниже 1,4840.

Для проведения испытания используют жидкий мед. 1 - 2 капли исследуемого меда наносят стеклянной палочкой на нижнюю призму рефрактометра РЛ или РДУ, предварительно юстированного по дистиллированной воде и измеряют показатель преломления. Определение повторяют 3 раза и вычисляют среднее арифметическое. По таблице устанавливают содержание воды в меде.

21. определение сан качества молока, опр кислотности молока. Санитарная оценка молока проводится по данным органолептических, физико-химических и бактериологических исследований. 3.1 Титрометрический (арбитражный) метод определения кислотности В коническую колбу вместимостью 150-200 см³ отмеривают с помощью пипетки 10 см³ молока, + 20 см³дист воды и 3 капли фенолфталеина. перемешивают и титруют из бюретки 0,1 н р-ром едкого натрия (калия) до появления слабо-розового окрашивания, соответствующего контрольному эталону окраски, не исчезающего в течение 1 мин.приготовление контр эталона окраски в такую же колбу вместимостью 150-200 см³ отмеривают пипеткой 10 см³молока, 20 см³дист воды и 1 см³ 2,5 % - ногор-ра сернокислого кобальта. Кис-сть молока в градусах Тернера равна кол-ву миллилитров 0,1 н раствора едкого натрия (калия), затраченного на нейтрализацию 10 см³ молока, умноженного на 10. Расхождение м-у параллельными определениямидб не больше 1^оТ. Допускается в отд случаях определять кислотность молока без добавления воды, полученную при этом кислотность понижают на 2^оТ. 3.2 Метод определения предельной кислотности В мерную колбу, вместимостью 1000 см³ отмеривают нужное кол-во (таблица 3.2) 0,1 н раствора едкого натрия (калия), прибавляют 10 см³ 1 % спиртового р-ра фенолфталеина и + дистводы до метки.

Таблица 3.2 Показатель кислотности в зависимости от количества использованного 0,1 н раствора едкого натрия (калия)

Количество 0,1 н раствора едкого натрия (калия) в см3
Кислотность в градусах Тернера

В ряд пробирок наливают по 10 см³ натрия (калия), приготовленного для опр соответствующего градуса кис-ти. В кажд пробирку с р-ром приливают по 5 см³ испытуемого молока и содержимое пробирки перемешивают путем перевертывания.

Если содержимое пробирки обесцвечивается, то кислотность данного образца молока будет выше соответствующего данному р-ру градуса.

22. определите фальсификацию меда (наличие сахара и крахмала). Муку или крахмал добавляют в мед для создания видимости кристаллизации, что характеризует его натуральность.В пробирку наливают 3 - 5 мл р-ра меда (1: 2), доводят до кипения, охлаждают до комнатной t и добавляют 3-5 капель р-раЛюголя. Появление синей окраски указывает на примесь к меду муки или крахмала.

С целью фальсификации сахарный песок добавляют при начальных признаках кристаллизации меда. Спустя некоторое время мед представляет собой равно мерно закристаллизовавшуюся массу.Для установления примеси сахарного песка, на предметном стекле готовят тонкие мазки из меда и просматривают под малым увеличением микроскопа. Кристаллы сахара имеют форму крупных глыбок (квадраты, прямоугольники, фигуры неправильной геометрической формы), кристаллы натурального меда (глюкозы) игольчатой или звездчатой формы.

23.опишите на патгис препарате характер изменения, возникающие в печени свиньи при сальмонеллезе. Сальмонеллез иб дом ж-х всех видов. Вызывается различными видами мо и проявляется патоморфологически септицемией, остр или хрон энтеритом. Первоначально здесь находят остр набухание лимф аппарата, в этот период места поражения выступают в просвет кишечника в виде валиков (пейеровы бляшки) или полушаровидных возвышений (соллитарные фолликулы). Гистологически находят картину крупноклеточной гиперплазии. В последующем эти крупноклеточные инфильтраты (очаговые или диффузные) подвергаются одновременно с кишечным эпителием некрозу. Что ведет к образованию струпа – пуговчатой язвы. Гистологически вокруг некротической массы находится большое количество лейкоцитов, отграничивающих этот участок от здоровой ткани (демаркационное воспаление). Необх исключить чуму, дизентерию, колиинфекцию, диплококковую инфекцию, отравления.

определите патгис изменения в миокарде крс характерные для лейкоза и определите клет инфильтрацию органа.отдельно

25.

26.

27.определите фальсификацию молока. Для увел-я вязкости молока (его густоты) к нему могут + крахмал или муку. Такое молоко считается фальсифицированным. В пробирке смешать 5 мл молока и 3 кап настойки йода или люголевского р-ра. При наличии крахмала молоко окрасится в синий цвет, а при его отсутствии в бледно-желтый. Сан оценка. Молоко с крахмалом или мукой после кипячения можно использовать в корм ж-м. опр. Соды Соду в молоко могут добавить как нейтрализующее вещество.а) проба с бромтимоловым синим (ГОСТ 24065-80)В пробирку налить 5 мл испытуемого молока и осторожно по стенке + 7-8 капель р-рабромтимолового синего. Через 10 минут наблюдают за изменением окраски кольцевого слоя. Желтая окраска кольцевого слоя - отсутствие соды в молоке. Появление зеленой окраски различных оттенков (от светло-зеленого до темно-зеленого) - о присутствии соды в молоке. б) проба с розоловой кис-й: В пробирку вносят 3-5 мл исследуемого молока и такое же количество 0,2% спиртового р-рарозоловой кис-ты. В присутствии соды молоко окрасится в малиновый цвет, а при отсутствии соды – в оранжевый. Сан оценка. Молоко с наличием соды после кипячения можно использовать в корм животным.

28. отбор проб молока для анализа. Перед вскрытием тары крышки фляг, цистерн и наружные их стенки очищают. Молоко в молокохранительных емкостях (ванна, танки) и автомолцистернах перемешивают мех путем в течение 3 – 4 мин, не допуская сильного вспенивания и переливания через края, добиваясь полной его однородности. Перед отбором проб молока из фляги молоко перемешивают мутовкой, перемещая ее вверх и вниз 8 – 10 раз. От молока, поставляемого в автомобильных цистернах, пробы отбирают кружкой с удлиненной ручкой емкостью 0,25 л и 0,5 л или металлической трубкой из каждой секции цистерны отдельно в чистый и сполоснутый исследуемым молоком сосуд. Из сред пробы молока после перемешивания выделяют лабораторный образец объемом, 0,5 л, предназначенный для анализа. При экспертизе молока в лабораториях всэ рынков сред проба и является лабораторным образцом. Ее берут в количестве не менее 250 мл. органолептическая оценка молока. Органолеп оценку запаха и вкуса молока согласно ГОСТу 28283 – 89 проводит комиссия, состоящая не менее чем из 3 экспертов, специально обученных и аттестованных. Запах и вкус молока определяют как непосредственно после отбора проб (не ранее, чем через 2 часа после выдаивания), так и после их хранения и транспортирования в течение не более 4 часов при температуре 4±2⁰ С. Вкус молока устанавливают после кипячения, набрав его в рот и сполоснув им всю ротовую полость. При этом медленно выдыхают воздух через нос. Анализируемые пробы сравнивают с пробой молока без пороков запаха и вкуса с оценкой 5 баллов, которую предварительно подбирают. Если расхождение в оценке запаха и вкуса отдельными экспертами превышает один балл, оценка пробы должна быть повторена не ранее, чем через 30 минут. Молоко с оценкой 5 и 4 балла относят к высшему, первому или второму сорту в зависимости от других показателей, установленных стандартом на молоко. Молоко с оценкой 3 балла относят в зимнее – весенний период ко второму сорту, в остальные года к несортовому.Цветопр в стеклянном цилиндре, просматривая его в отраженном дневном цвете. Норм цв коровьего молока – белый или слегка желтоватый.Консистенцию устанавливают при медленном переливании (по стенке сосуда) из одного химического стакана в другой. Обычно она однородная, без наличия сгустков, хлопьев, слизи и нетягучья. Опр плотности молока Плотность цельного коровьего молока колеблется в пределах 1,027-1,030 г/см³. Плотность молока должна определяться не ранее, чем через 2 ч после дойки. Цилиндр с иссл пробой устанавливают на ровной горизонтальной поверхности и измеряют t пробы t1. Отсчет показаний t проводят не ранее, чем через 2 - 4 минуты после опускания термометра в пробу.1 отсчет показаний плотности Р₁, проводят визуально со шкалы ареометра через 3 мин после установления его в неподвижном положении. После этого ареометр осторожно приподнимают на высоту до уровня балласта в нем и снова опускают, оставляя его в свободно плавающем состоянии. После установления его в неподвижном состоянии, проводят 2 отсчет показаний плотности Р₂. При отсчете показаний плотности глаз должен находиться на уровне мениска. Отсчет показаний проводят по верхнему краю мениска.Отсчет показаний ареометра проводят до половины цены наименьшего деления шкалы. Затем измеряют температуру t₂ пробы.

29.

30.

31.

32.подготовка операционного поля перед выполнением операции. Место операции выстригают и выбривают, широко захватывая область вокруг.
В практике для подготовки операционного поля можно воспользоваться теми же способами, что и при подготовке рук. В настоящее время в ветеринарной практике для подготовки операционного поля почти исключительно пользуются двухкратным смазыванием настойкой иода сухой кожи, первый раз за 10 минут до операции перед обезболиванием, а второй раз перед самой операцией. Иногда для подготовки операционного поля можно использовать 5-процентный раствор марганцевокислого калия.Для большей асептичности раны рекомендуется вокруг поля операции закрепить особыми закрепами или временно пришить стерильные салфетки.

33.подготовка искусственной вагины для получения спермы от быка. Устройство искусственной вагины. Искусственные вагины для всех видов сельскохозяйственных животных построены по одному принципу. Они представляют собой прибор, состоящий из цилиндра- остова (из толстостенной резины, для вагины быка и хряка, эбонитового для вагины барана, металлического для жеребца) с патрубком, резиновой камеры, эбонитового краника, резиновых колец, спермоприемника, держателя спермоприемника (уздечки) и отрезка резиновой трубки, надеваемого на краник.
Подготовка искусственной вагины. Подготовка искусственной вагины состоит из следующих операций: сборки, мытья, обеззараживания, наполнения горячей водой, смазки резиновой камеры, присоединения спермоприемника, нагнетания воздуха, проверки температуры. Подготовленные искусственные вагины до момента получения спермы должны находиться в термостате при температуре 40° С. Сборка. Внутрь цилиндра вставляют резиновую камеру так, чтобы гладкая поверхность ее была обращена в просвет цилиндра, а шероховатая - к его стенкам. Концы резиновой камеры натягивают; на оба края цилиндра. Камера дб натянута равномерно без перекручивания и складок. Для большей прочности камеру на цилиндре вагины крепят резиновыми кольцами.
Мытье. Вагину моют 2-3%-ным р-ром Na гидрокарбоната или 1-1,5%-ным р-м кальцинированной соды при помощи ерша, щетки или куска марли, удерживаемой корнцангом. После этого вагину споласкивают чистой горяч водой и насухо вытирают марлей или полотенцем. Обеззараживание. Чистую искусственную вагину обеззараживают, протирая внут поверхность резиновой камеры ватным тампоном, смоченным в 95% этиловом спирте, фиксируя его корнцангом, или кипятят в специальном электрическом стерилизаторе в течение 15-20 мин. Наполнение горячей водой. В вагину наливают воду, нагретую до 60-70° С с таким расчетом, чтобы к моменту получения спермы t внутри искусственной вагины была 40-42° С. В вагину для быка вводят 400-500 мл воды. Смазка резиновой камеры. Всю внутреннюю поверхность резиновой камеры смазывают стерильным медицинским вазелином по всей длине, за исключением участка у конца камеры, прилегающего к спермоприемнику. Смазывание производят обожженной на пламени горелки стек палочкой или тампоном, фиксируя его корнцангом. Присоединение спермоприемника. Спермоприемник предварительно моют и обрабатывают спиртом или стерт кипячением. Можно его стерилизовать и в суш шкафу при t 160-180° С. Перед употреблением спермоприемник ополаскивают несколько раз 1% стер р-ром натрия хлорида. В межстенную полость двухстенныхспермоприемников наливают воду, подогретую до 35-40° С, с таким расчетом, чтобы после обогрева стенок вода имела t 30-35° С. После заполнения водой отверстие спермоприемника закрывают снизу пробкой. Спермоприемник вставляют в вагину на стороне, конец которой не смазан вазелином. На вагине для быка спермоприемник закрепляют держателем (уздечкой).
Нагнетание воздуха. В межстенную полость искусственной вагины резиновым баллоном нагнетают воздух до тех пор, пока внутренние стенки резиновой камеры не сомкнутся.
Проверка t Искусственную вагину держат в наклонном положении спермоприемником вверх (чтобы предотвратить затекание в него вазелина) и в свободный конец ее вставляют спиртовый термометр. t в вагине перед получением спермы l, не ниже 40° С и не выше 42° С. Снижение t в искусственной вагине может привести к торможению половой ф-и производителя; t выше 42° С опасна для жизнеспособности сперматозоидов.

34. подготовьте пробу мяса для физ-хим исследования. Для физико-химического и бактериологического исследований в ветеринарную лабораторию отправляют следующие пробы: пробы мышц, массой не менее 200 г; Реакция на пероксидазу Сущность р-и заключается в том, что находящийся в мясе фермент пероксидаза разлагает перекись водорода с образованием кислорода, к-й и окисляет бензидин. При этом обрпарахинондиимид, к-й с недоокисленным бензидином дает соединение (парахинондиимид) сине-зеленого цвета, переходящего в бурый.

В ходе этой р-и важное значение имеет активность пероксидазы. В мясе здоровых животных она весьма активна, в мясе больных и убитых в агональном состоянии активность ее значительно снижается.

Пероксидаза + бензидин+ 2H₂O₂ + бензидин

2 H₂O O₂

 

парахинондиимид (сине-зеленый цвет, переходящий в буро-коричневый).

Техника определения. В пробирку наливают 2 мл мясной вытяжки в соотношении 1:4 (приготовленная для определения рН колориметрическим способом), приливают 5 капель 0,2%-ного раствора бензидина, взбалтывают и добавляют 2 капли 1%-ного р-ра перекиси водорода. Оценка результатов. Приположительной реакции мясная вытяжка через 0,5 - 1,5 минуты приобретает сине-зеленый цвет, к-й быстро переходит в буро-коричневый. Такая р-я свойственна мясу, полученному от здорового животного.

Слабо полож р-я (сомнительная). Вытяжка из мяса переутомленных, старых и заболевших животных приобретает сине-зеленый цвет, к-й с задержкой переходит в буро-коричневый. Отриц р-я. В вытяжке из мяса тяжело больных или убитых в агональном состоянии животных сине-зеленый. Определение рН потенциометрическим способом. Для приготовления вытяжки 1:10 берут 10 г чистой мышечной ткани, помещают в ступку, мелко измельчают ножницами и растирают пестиком. Добавляют немного дистиллированной воды из общего количества 100 мл. Мясную кашицу переносят в колбу, ступку промывают оставшимся количеством воды, которую затем сливают в ту же колбу. Колбу закрывают пробкой, мясо с водой взбалтывают 3 минуты, затем 2 минуты отстаивают и 2 минуты взбалтывают вновь. Вытяжку фильтруют через три слоя марли, а затем через бумажный фильтр в химический стакан, содержимое которого исследуют с помощью электродов потенциометра. Со шкалы прибора снимают показатели pH данной пробы.

Отдельно

36.подготовка шприца катетера для осеменения коров. Шприц-катетер стерилизуют, используя растворы, налитые в четыре флакона. В первом, третьем и четвертом флаконах находится 0,9%-ный стерильный раствор NaCI, в третьем и четвертом – при t° = 38-40°С, во втором флаконе – 70%-ный спирт. Снаружи после каждого осеменения шприц-катетер протирают стерильной салфеткой, а затем тампоном, смоченным 96%-ным спиртом. Затем его промывают во флаконе № 1 5-6 раз, набирая и выливая 0,9%-ный раствор NaCI в сливную чашу. Далее 3-4 раза промывают из флакона № 2, 3 и 4. Затем набирают сперму в шприц-катетер.

37. техника выполнения блокады звездчатого узла. Новокаиновая блокада звездчатого симпатического ганглия показана при восп процессах в области шеи, грудконечностей, экссудативных бронхитах, отеке легких, пневмониях, плевритах, болезнях сердца и грудной части пищевода. При правильно выполненной блокаде грудная часть вагуса не блокируется. Техника блокады. Круп ж-х фиксируют в станке, макс отводят назад груд конечность соответствующей стороны, шею поворачивают в противоположную сторону. Мелких ж-х (телят, овец, коз) фиксируют стоя в таком же положении или лежа на боку. Иглу вкалывают позади прощупываемого бугорка 1-го ребра и на 2—3 см ниже его (у овец, коз, телят и крупных собак на 1 см). Здесь вк инъецируют теплый 0,25%-ный р-р новокаина. Затем, непрерывно вводя р-р новокаина, продвигают иглу под небольшим углом спереди назад и внутрь до упора в задний край 1-го ребра. Сместив конец иглы с упомянутого края ребра, прокалывают межребер мышцы и продвигают иглу до упора в тело позвонка. Нужно помнить, что у лошадей м-у бугорками 1-го и 2-го ребер из грудной полости выходит поперечная шейная артерия и входит одноименная вена (у собак то же самое с левой стороны) Как только игла коснется тела позвонка, вновь медленно инъецируют р-р новокаина, ощущая при этом сопротивление. Продолжая вводить новокаин, постепенно извлекают иглу, и как только ее конец окажется на поверхности упомянутого мускула, в надплевральном соединительнотканном пространстве, сопротивление на поршень значительно снизится, но все же будет ощущаться. Это свидетельствует о правильном положении иглы. Не смещая иглу постепенно инъецируют весь р-р новокаина, крупным животным 20-30, мелким — 5-10 мл. Свободное, без какого-либо сопротивления, введение р-ра свидетельствует о попадании в плевральную полость.
Смещение иглы после упора в тело 1-го грудного позвонка и продвижение ее книзу параллельно поверхности последнего нежелательно, поскольку р-р распространяется м-у телом позвонка и длинным шейным мускулом, а ганглий лежит на наруж поверхности этого мускула, поэтому блокады звездчатого ганглия не наступает. Только при большом количестве введенного раствора последний может отслоить мускул (что нежелательно) и достигнуть звездчатого ганглия.

38.Правила взятия и отправки патологического материала при подо­зрении на отравление для химико-токсикологического анализа)

 

Подозрение на отравление вызывают следу­ющие признаки:

характерный запах содержимого желудка (горько-миндальный, чесночно-хлороформный и т. п. при исключении запаха приме­ненных лекарств);

окраска содержимого желудка: желтая (от азотной и пикрино­вой кислот, солей хрома), зеленая, синяя (от солей меди) или ино­го цвета;

кровянистое содержимое желудка;

подозрительные включения в содержимом желудка (белые кри­сталлы сулемы и стрихнина, нерастворившиеся белые кристаллы мышьяка);

набухшие, увеличенные, дряблые, легко разрывающиеся, серо-желтой окраски и т. п. слизистая оболочка желудка, почки, сердце;

поражения начальных отделов пищеварительного тракта (ро­товой полости, пищевода, желудка);

изменение цвета и консистенции крови.

При подозрении на отравление в лабораторию направляют ма­териал от трупов животных для химического и гистологического исследовании. Одновременно с целью определения источника от­равления посылают все корма (по 1 кг корма каждого вида), кото­рые скармливали животным. Обязательно посылают остатки кор­мов из кормушки.

Для химического исследования в лабораторию посылают в от­дельных банках следующий материал:

часть пищевода и пораженную часть желудка с содержимым (0,5 кг), а от крупного и мелкого рогатого скота и верблюдов — часть пищевода, сычуга и небольшое количество содержимого из разных мест сычуга и рубца.

Желудок и его содержимое берут следующим образом. При вскрытии трупа после осмотра внутренних органов перевязывают лигатурами пищевод и двенадцатиперстную кишку вблизи стенки желудка (по две лигатуры) и перерезают между ними. Желудок из­влекают и кладут в кюветы, а затем вскрывают. Содержимое же­лудка предварительно (не удаляя из желудка) перемешивают (нельзя использовать металлические предметы), после чего осто­рожно, чтобы не загрязнить, берут часть его;

отрезок тонкого кишечника (длиной до 40 см) в наиболее пора­женной части вместе с содержимым (до 0,5 кг);

отрезок толстого кишечника (длиной до 40 см) в наиболее по­раженной части вместе с содержимым (до 0,5 кг);

часть печени (0,5—1 кг) с желчным пузырем (от крупных жи­вотных), печень целиком (от мелких животных);

почку;

мочу в количестве 0,5 л;

скелетные мышцы в количестве 0,5 кг.

Кроме того, в зависимости от особенностей предполагаемого отравления дополнительно посылают:

при подозрении на отравление через кожу (путем инъекции) — часть кожи, клетчатки и мышцы из места предполагаемого введе­ния яда;

при подозрении на отравление газами (сероуглеродом и т. д.) — наиболее полнокровную часть легкого (0,5 кг), трахею, часть серд­ца, кровь (200 мл), часть селезенки и головного мозга. От мелких животных (в том числе от птиц) берут органы целиком.

При вскрытии отрытого из земли трупа животного берут сохра­нившиеся внутренние органы (до 1 кг); землю под трупом (0,5 кг) из 2—3 мест.

Для гистологического исследования посылают небольшие ку­сочки (размером 1x3x5 см) следующих органов: печени; почек (обязательно с наличием коркового и мозгового слоев); сердца; легкого; селезенки; языка; пищевода; желудка; тонкого и толстого кишечника; скелетных мышц; лимфоузлов; головного мозга (по­ловину его). Кусочки берут из пораженных участков органов и на границе с ними из непораженной части ткани и помещают в 10%-ный раствор формальдегида (из расчета на 1 часть патологи­ческого материала 10 частей раствора формальдегида).

При подозрении на отравление веществами, употребляемыми для борьбы с сельскохозяйственными вредителями, минеральны­ми удобрениями, красками посылают их пробы в количестве от 100 до 1000 г.

От больных животных при подозрении на отравление посыла­ют рвотные массы, желательно первые порции; мочу (все количе^ ство, которое удалось получить); кал (0,5 кг); содержимое желуд­ка, полученное через пищеводный зонд; корма и вещества, кото­рые могли стать причиной отравления.

Если заподозрено, что отравление наступило вследствие поеда­ния ядовитых растений, берут для ботанического анализа пробы растений. Для этого деревянную рамку с внутренним размером 1 м2 накладывают на травостой луга или пастбища в местах выпаса скота. Все оказавшиеся внутри рамки растения срезают под ко­рень. Если травостой однотипный, пробу с 1 га луга или пастбища берут в 3—5 местах, а если травостой разнотипный, количество проб увеличивают с целью большего охвата различных растений и посылают среднюю пробу.

Если пробу трав, взятых для исследования, можно доставить в лабораторию в течение нескольких часов, траву посылают в сыром виде. В противном случае пробы сушат и доставляют су­хими. Пересылают пробы трав в коробках или в плетеных кор­зинах.

Пробы берет ветеринарный специалист или зоотехник.

Материал, взятый для химического исследования, нельзя об­мывать и держать вместе с металлическими предметами; его от­правляют в чистом, неконсервированном виде. Материал живот­ного происхождения консервируют только в том случае, если он будет доставлен в лабораторию не ранее чем через 3—4 дня после взятия. Для консервирования применяют спирт-ректификат в со­отношении 1 часть спирта на 2 части материала. Одновременно посылают и пробу спирта (не менее 50 г), которым консервирован материал. Применять два консервирующих вещества нельзя, так как они сами являются ядами (хлороформ) или разрушают неко­торые яды (формальдегид).

Упаковывают материал в чистые широкогорлые стеклянные или глиняные банки, плотно закрывающиеся стеклянными при­тертыми пробками, а если таких нет, чистыми, не бывшими в употреблении корковыми пробками или чистой писчей или воще­ной бумагой. Поверх пробки банку обертывают чистой бумагой, обвязывают тонким шпагатом (или толстой крепкой ниткой), концы которого скрепляют сургучной печатью.

На каждую банку наклеивают этикетку, на которой чернилами записывают, какие органы и в каком количестве (по массе) поме­щены в банку, вид и кличку животного, даты падежа и вскрытия трупа, какое подозревается отравление и кому принадлежит жи­вотное.

Взятый материал отправляют в лабораторию немедленно с на­рочным.

При получении результатов судебно-химического исследова­ния эксперт должен уметь правильно истолковать положительный или отрицательный ответ. Если прислан положительный ответ, то эксперт, прежде чем дать окончательное заключение об отравле­нии, должен решить ряд вопросов:

1. Не попал ли яд в труп после смерти, во время вскрытия или в другие моменты?

2. Не является ли обнаруженное ядовитое вещество лекар­ственным средством, употреблявшимся при лечении больного жи­вотного, при применении средств, служащих противоядием, при попадании дезинфицирующих веществ из окружающей среды (из мест, где содержалось животное)?

3. Согласуются ли клинические симптомы и патологоанато-мические изменения с представлением о действии обнаруженно­го яда?

В случаях отрицательного результата судебно-химического ис­следования решают следующие вопросы.

1. Не выделился ли яд из организма до смерти?

2. Не наступило ли разложение яда в организме при жизни?

 

3. Не разложился ли яд в трупе после смерти? Давать ответ на этот вопрос приходится чаще, чем на предьщущие, так как при разложении трупа многие органические яды способны разлагать­ся. Стойко сохраняются металлы, мышьяк, ртуть, свинец, таллий и обнаруживаются в трупном материале даже через несколько ме­сяцев и лет. Такие яды, как стрихнин, атропин, кокаин, быстро исчезают при трупном разложении. Яд может разлагаться также и в том материале, который послан для химического исследования в банках.

4. Не попал ли яд в организм в слишком малом количестве, например морфий?

5. Мог ли быть установлен яд методами, которые применялись для химического анализа?

Учитывают также результаты гистологического исследования. Кроме указанных методов в отдельных случаях прибегают к био­логическому исследованию.