Произвести посев исследуемого материала из гнойного очага на МПА в чашке Петри.
Материал, взятый петлей,наносят на пов-ть агара параллельными штрихами, чем достигается последовательное уменьшение концентрации бактерий вплоть до единичных клеток.
Другой способ состоит в приготовлении суспензии с малой концентрацией бактерий. Одну каплю суспензии наносят петлей на поверхность питательного агара в чашку Петри и тщательно втирают стерильным шпателем в среду, равномерно распределяя материал по всей ее пов-ти.
Посевы газоном производят шпателем на питательный агар в чашке Петри. Для этого, приоткрыв левой рукой крышку, петлей или пипеткой наносят посевной материал на поверхность питательного агара. Затем проводят шпатель через пламя горелки, остужают его о внутреннюю сторону крышки и растирают материал по всей пов-ти среды.
10.Произвести пересев однородной изолированной колонии с МПА в чашке Петри на скошенный агар и среду Ресселя. Объяснить цель посева.
Среда Ресселя применяется при изучении б/х свойств энтеробактерий. Содержит питательный агар, лактозу, глюкозу и индикатор бромтимоловый синий. Приготавливают в пробирках по 6-8 мл в виде столбика со скошенной пов-ю. Цвет незасеянной среды травянисто-зеленый. Посев делают штрихом по скошенной пов-ти и уколом в глубину столбика. Микроорганизмы, ферментирующие глюкозу до кислоты, вызывают изменение окраски столбика среды из первоначальной в желтую; скошенная поверхность при этом преобретает синий цвет. Лактозоположительные м/о (E/ coli) изменяют цвет скошенной части среды и столбика в желтый. М/о, образующие щелечь, изменяют цвет среды в синий. Газообразование отмечается в толще столбика среды.
11. Посев на среду Китт-Тароцци. Используется для накопления анаэробов. Среду перед посевом прогреть в кипящей водяной бане в10-20 минут, охладить. Сделать посев микробиологической петлей. Посевы заливают вазелиновым мслом и помещают в термостат. Посев в чашку Петри шпателем
Левой рукой приоткрывают крышку. Материал набирают, петлей или ув пипетку, наносят на поверхность МПА и втирают шпателем' по всей поверхности агара. При посеве материала, обильно обсемененного микрофлорой, используют 2-3 чашки для последовательного посева.
Посев в пробирку петлей
Полученные изолированные колонии служат для выделения чистой культуры микроба.
Осторожно приподняв крышку чашки, захватывают прокаленной и остуженной петлей одну отдельно расположенную колнию и вносят в пробирку с плотной питательной средой. Пробирку держат в наклонном положении в левой руке между большим и указательным пальцами. Правой рукой держат петлю с посевным материалом. Мизинцем, мякотью ладони правой руки вынимают пробку из пробирки, обжигают в пламени горелки ее край и вносят в нее петлю, посев производят: а) штрихами на поверхности агара;б) уколом в столбик агара.
Произвести учет результатов роста бактерий на средах Плоскирева и Эндо при
подозрении на дизентирию и колиэнтерит.
При дизентерии: лактозоотрицательные прозрачные бесцветные колонии.
При колиэнтерите: колонии имеют дискообразной форму, слегка выпуклые с ровными краями, малиново-красного цвета.
Произвести учет результатов роста потогенных стафилококков на кровяном и желточно-солевом агаре.
На желточно-солевом агаре: лецитиназная реакция, проявляющаяся в образовании вокруг колонии зоны помутнения с радужным венчиком в отраженном свете
На кровяном агаре: выпуклые, ровные непрозрачные колонии желтого или золотистого цвета.
Назвать состав, назначение компонентов и провести учет результатов роста бактерий на среде Китта-Тароцци.
Состоит из питательного бульона, 0,5% глюкозы и кусочков печени или мясного фарша для адсорбции кислорода. Перед посевом среду прогревают на кипящей водяной бане для удаления воздуха. После посева среду заливают небольшим слоем вазелинового масла.
15. Произвести учет чувствительности стафилококков к антибиотикам методом
стандартных дисков.
Для определения чувствительности стафилококка к антибиотикам смыв 1,0 мл двухмиллиардной суспензии испытуемой культуры засевают газоном на чашку Петри с мясопептонным агаром.
На засеянные, подсушенные чашки, пинцетом (стерильно) накладывают бумажные цветные диски, пропитанные различными антибиотиками (левомицетином, стрептомицином, неомицином, эритромицином, мономицином, пенициллином и т. д.). Хранить диски нужно в сухом месте при температуре не выше 20°С.
Диски накладывают на расстоянии двух сантиметров от края чашки и на равном расстоянии один от другого. Чашки на 18—20 часов помещают в термостат при температуре 37°С.
Появление стерильных зон вокруг дисков указывает на задерживающее действие антибиотиков. Величина стерильных зон указывает на эффективность действия антибиотиков.
Оценка результатов производится с помощью линейки. Измеряют диаметр зон задержки роста микробов вокруг бумажных дисков, включая диаметр самого бумажного диска.
Оценка результатов. Если зона задержки роста вокруг диска отсутствует, то, следовательно, микроб устойчив к данному антибиотику.