АСЕПТИКА И АНТИСЕПТИКА
Асептика – комплекс мероприятий, направленных на предупреждение попадания возбудителей инфекции в рану или организм человека.
Антисептика – комплекс мероприятий, направленных на борьбу с инфекцией в организме человека, предупреждение или ликвидацию инфекционного воспалительного процесса.
АСЕПТИКА
Препараты, оказывающие антибактериальное действие на гноеродную микрофлору, делят на две группы – химиотерапевтические средства и химические средства для дезинфекции и стерилизации.
· Из химических средств для дезинфекции и стерилизации широко используют в хирургии препараты йода: 5% и 10% спиртовой раствор применяют для смазывания кожи вокруг раны, обработки поверхностных ран и ссадин, операционного поля.
o Калия йодид содержат около 4,5% свободного йода, перед употреблением его разводят дистиллированной водой в соотношении 1:4,5. Препарат применяют для обработки операционного поля.
o Повидон-йод - соединение йода с поливинилпирролидоном, содержит 0,1-1% йода. Используют для обработки рук, операционного поля.
· Хлорамин Б используют в виде раствора для дезинфекции рук, предметов ухода за больными, неметаллических инструментов, помещений.
· Надмуравьиная кислота в комплексе с пероксидом водорода (первомур, препарат С-4) предназначена для обработки рук перед операцией, для обработки хирургических инструментов и резиновых перчаток.
· Этанол используют в виде 70% или 96% раствора для обработки рук, операционного поля, оптических инструментов, шовного материала.
· Формалин – раствор, применяемый в виде 0,5-5% раствора для дезинфекции перчаток, инструментов, катетеров, дренажей.
|
|
· Дегмицид, применяют 1% раствор (т.е. в разведении 1:30) для обработки операционного поля и рук хирурга.
· Бензалкония хлорид в виде 1% или 10% раствора применяют для стерилизации инструментов, резиновых перчаток, дренажей. С целью предупреждения коррозии инструментов добавляют натрия карбонат из расчёта 2 г на 1 л рабочего раствора.
· Хлоргексидин выпускается в виде биглюконата, в виде 20% раствора. Для обработки операционного поля и дезинфекции инструментов раствор разводят 70% раствором этанола в отношении 1:40. Полученным 0,5% водно-спиртовым раствором обрабатывают операционное поле 2 раза с интервалом 2 мин.
· «Аламинол». Обладает широким бактерицидным действием по отношению к неспецифической гноеродной флоре, возбудителям туберкулёза, грибам, вирусам, а также моющими свойствами. Применяют для дезинфекции поверхностей в помещениях, предметов обстановки, санитарно-технического оборудования, белья, хирургических инструментов, эндоскопов. Раствор применяют многократно. Контроль качества предстерилизационной подготовки проводят с использованием пробы на остаточную кровь. Время обработки (погружение) изделий из металла, пластмасс – 60 мин при концентрации 5%, загрязнённого белья (замачивание) – 120 мин при концентрации 5%.
· «Кеми-сайд», спектр бактерицидного действия широкий: включает палочку туберкулёза, вирусы, грибы. Препарат разводят водой, готовят 0,5%, 1%, 2% раствор. Применяют для дезинфекции аппаратов, приборов, санитарно-технического оборудования, поверхностей стен, столов, пола. Способ обеззараживания – одно или двукратное протирание.
|
|
· «Лизафин-специаль», антимикробный спектр – бактерии, вирусы, грибы. Обладает моющим свойством. Применяют в концентрациях 1-5% по препарату. Используют для дезинфекции поверхностей (пола, стен), хирургических столов, мебели, предметов ухода за больными. Применяют для предстерилизационной обработки эндоскопов, инструментов. Дезинфекцию проводят путём замачивания, протирания, погружения.
Борьба с микрофлорой на путях воздушного инфицирования:
Вся работа хирургического стационара по профилактике экзогенной инфекции начинается с разделения больных на «чистых» и «гнойных».
· Больных с гнойно-воспалительными хирургическими заболеваниями госпитализируют в гнойные хирургические отделения, которые полностью изолированы от чистых отделений. В них работает свой персонал, имеются свои перевязочные, операционные, процедурные помещения. При наличии лишь одного хирургического отделения в нём выделяют специальные палаты для инфицированных больных.
· В приёмном отделении, где проводятся первичный осмотр и обследование поступивших, сразу же разделяют потоки больных на «чистых» и «гнойных». В приёмном отделении выполняют санитарно-гигиеническую обработку, которая предусматривает мытьё больных и их переодевание. При определённых условиях (педикулёз, чесотка) проводят специальную обработку, а также дезинфекцию и дезинсекцию белья.
· В хирургическом отделении для поддержания санитарного режима проводят ежедневную влажную уборку с применением антисептических средств и 1 раз в 3 дня – влажную уборку стен. Влажной обработке подвергают мебель отделения. Регулярное проветривание, использование кондиционеров позволяют снизить степень бактериальной обсеменённости помещений отделения. Важное значение имеет санитарный режим для персонала: душ перед началом работы, сменные одежда и обувь, ношение колпаков. Важное средство профилактики – обследование на бациллоносительство и изоляция сотрудников с простудными и гнойничковыми заболеваниями.
|
|
· Допустимое количество микроорганизмов в 1 м3 воздуха операционной перед началом работы не должно превышать 500, во время операции – 1000 при условии отсутствия в воздухе патогенных микроорганизмов. Поддерживать такой уровень удаётся с помощью специальных устройств системы вентиляции, режима работы и уборки операционной, дезинфекции воздуха и предметов.
· Хирургический стационар включает несколько основных функциональных подразделений: операционный блок, хирургические отделения, перевязочные, процедурные.
Операционный блок – набор специальных помещений для выполнения операций и проведения обеспечивающих их мероприятий. Должен располагаться в отдельном помещении или крыле здания, соединённом коридором с хирургическими отделениями, или на отдельном этаже многоэтажного хирургического корпуса. Операционный блок отделён от хирургических отделений специальным тамбуром – чаще это часть коридора, в которую выходят помещения операционного блока общего режима. Для обеспечения режима стерильности в операционном блоке выделяют специальные функциональные зоны:
1. Зона стерильного режима объединяет операционную, предоперационную и стерилизационную. В помещениях этой зоны производят следующие действия: в операционной – непосредственно операции; в предоперационной – подготовку рук хирурга к операции; в стерилизационной – стерилизацию инструментов.
2. В зону строгого режима входят такие помещения, как санпропускник, состоящий из комнат для раздевания персонала, душевых установок, кабин для надевания стерильной одежды. В эту же зону входят помещения для хранения хирургических инструментов и аппаратов, наркозной аппаратуры и медикаментов, кабинет переливания крови, помещения для дежурной бригады, старшей операционной сестры, санитарный узел для персонала операционного блока.
3. Зона ограниченного режима, или техническая зона, объединяет производственные помещения для обеспечения работы операционного блока: здесь находятся аппаратура для кондиционирования воздуха, вакуумные установки, установки для снабжения операционной кислородом и наркотическими газами, здесь же располагаются аккумуляторная подстанция для аварийного освещения, фотолаборатория для проявления рентгеновских плёнок.
4. В зоне общего режима находятся кабинеты заведующего, старшей медицинской сестры, помещения для разбора грязного белья и др.
В зоне стерильного режима должны находиться только участвующие в операции.
Контроль за режимом стерильности операционного блока проводят периодически путём бактериологического исследования воздуха операционной, смывов со стен, потолка, аппаратов и приборов. Материалы для посева берут 1 раз в месяц; еженедельно выборочно делают посев с рук работников блока для контроля стерильности.
Стерильный режим в операционной достигается за счёт предупреждения занесения.
В операционной предусмотрены следующие виды уборки:
o Перед началом операции влажной тряпкой протирают все предметы, приборы, подоконники, удаляют осевшую за ночь пыль (предварительная уборка).
o В ходе операции постоянно убирают упавшие на пол салфетки, шарики, инструменты (текущая уборка).
o В промежутке между операциями, когда больной вывезен из операционной, убирают бельё, салфетки, инструменты; влажной салфеткой, смоченной раствором антисептических средств, протирают операционный стол и накрывают его простынёй; пол протирают влажной тряпкой (послеоперационная уборка).
o По окончании рабочего дня производят заключительную уборку, которая включает влажную уборку с протиранием потолка, стен, подоконников, всех предметов и аппаратуры, пола с использованием дезинфицирующих растворов и последующим включением бактерицидных ламп.
o В конце недели осуществляют генеральную уборку операционной. Начинают её с дезинфекции операционной: потолок, стены, все предметы, пол опрыскивают дезинфицирующим раствором, а затем удаляют его путём протирания. После этого проводят общую влажную уборку и включают бактерицидные (УФ) лампы. Генеральная уборка может быть и внеочередной – при загрязнении операционной гноем, кишечным содержимым, после операции у больных с анаэробной инфекцией.
o Кроме перечисленных видов уборки для борьбы с инфекцией производят плановую и внеплановую дезинфекцию операционного блока.
§ Плановая дезинфекция производится 1 раз в месяц, при необходимости и чаще.
§ Внеплановая – проводится после отдельных оперативных вмешательств, в ходе которых операционная инфицировалась кишечным содержимым или анаэробной инфекцией.
* Таким же образом осуществляется уборка перевязочных и в хирургических отделениях.
Для облучения воздуха и предметов, находящихся в операционной, используют напольные, настенные, потолочные бактерицидные УФ-лампы различной мощности. Бактерицидные лампы, снабжённые экранами, защищающими от прямого действия УФ-лучей, могут работать при наличии людей.
Для обеззараживания воздуха в операционной могут быть использованы аэрозоли бактерицидных веществ. В качестве бактерицидных веществ используют смесь, содержащую 3% раствор пероксида водорода и 0,5% молочной кислоты. Распыление должно проводиться накануне, в крайнем случае – не менее чем за 2 ч до начала операции.
Предупреждения загрязнения воздуха в операционной достигают механической системой вентиляции, осуществляемой путём подачи воздуха с улицы или за счёт его рециркуляции. С помощью приточной вентиляции воздух нагнетается через фильтры в операционную. Вместе с оседающей на фильтрах пылью удаляются фиксированные на ней микробы. Воздух выходит из операционной через естественные щели. При отсутствии централизованной системы очистки воздуха от пыли и микробов могут быть использованы специальные передвижные воздухоочистители. За 15 мин работы аппарата количество микробов в операционной уменьшается в 7-10 раз.
Для выполнения некоторых вмешательств используют операционные с ламинарным потоком стерильного кондиционированного воздуха. поток обеспечивает за час 500-кратный обмен воздуха, который нагнетается под давлением 0,2-0,3 атм. через специальный фильтр, представляющий собой потолок операционной, и выходит через отверстия в полу. Этим создаётся постоянный вертикальный поток: в операционную поступает стерильный воздух, а направленный его поток уносит микроорганизмы. Ламинарный поток воздуха может быть как вертикальным, так и горизонтальным.
В старых операционных возможна установка специального бокса-изолятора с ламинарным потоком воздуха: стены бокса из пластика или стекла не достигают пола, и нагнетаемый через фильтр-потолок стерильный воздух создаёт вертикальный ламинарный поток, который вытесняет имеющийся в боксе воздух в щели, образовавшиеся между его стенками и полом.
Сестра в стерильном халате и стерильных перчатках с помощью ножной педали открывает бикс и достает из него халат, свернутый в виде рулона; достает халат, поворачивает его лицевой стороной к себе и удерживает его руками в верхней части.
Стерильную маску хирург надевает в предоперационной перед обработкой рук/ достает ее из кармана халата, а завязывает их санитарка.
Перед надеванием перчатки проверяют на целостность, за счет задержки в них воздуха. Надев перчатки, медсестра тщательно обтирает их шариком, смоченным спиртом.
Если сестра без перчаток, то надевает она их на хирурга, растягивая манжетку, затем подает шарик для обработки перчаток.
Если сестра в перчатках, то она отворачивает манжетку для прикрытия своих пальцев.
При повреждении перчатки под манжетку подводят первый палец противоположной руки и стягивают ее. Хирург развязывает тесемки на рукавах и берет халат первым и вторым пальцами обеих рук на уровне сосков и максимально стягивает халат, который затем снимает санитарка.
+ Мебель, размещаемая в палатах хирургического отделения, должна быть удобной для больного и отвечать следующим требованиям:
1. легко подвергаться влажной уборке,
2. не портиться от мытья и влажной дезинфекции,
3. свободно передвигаться.
Лишних предметов мебели в палатах быть не должно.
+ Предоперационная, операционный зал и перевязочная должны быть просторными, светлыми, иметь широкие окна, выходящие на север или северо-восток (нет воздействия прямых солнечных лучей), и снабженными специальными устройствами для вентиляции – кондиционерами.
Стены и пол помещений операционного блока и перевязочной должны быть покрыты водостойкими неорганическими материалами, непроницаемыми для пыли, и быть гладкими (обычно используется кафельная плитка). Все места соединения стен, пола и потолка должны быть закругленными и выполнены из материалов, устойчивых к влаге и температурным колебаниям, допускающих многократное мытье и дезинфекцию.
+ Операционные стали делят на 3 класса:
· Первый класс – не более 300 микробных клеток в 1 кубическом метре воздуха.
· Второй класс – до 120 микробных клеток – этот класс предназначен для сердечнососудистых операций.
· Третий класс – класс абсолютной асептики – не более 5 микробных клеток в кубическом метре воздуха. Этого можно добиться в герметичной операционной, с вентиляцией и стерилизацией воздуха, с созданием внутри операционной зоны повышенного давления (чтобы воздух стремился из операционных наружу). А также устанавливаются специальные двери-шлюзы.
Борьба с микрофлорой на этапах контактного инфицирования раны:
Стерилизация – полное освобождение от микроорганизмов всех предметов, растворов, материалов. Стерилизация инструментов, перевязочного материала и белья включает следующие основные этапы:
I. Предстерилизационная подготовка материала;
II. Укладка и подготовка к стерилизации;
III. Стерилизация;
IV. Хранение стерильного материала.
Цель предстерилизационной подготовки – тщательная механическая очистка инструментов, шприцев, инъекционных игл, систем для трансфузии, удаление пирогенных веществ и уничтожение вируса гепатита. Персонал должен работать в резиновых перчатках.
Бывшие в употреблении, но неинфицированные инструменты тщательно моют проточной водой щётками в отдельной раковине в течение 5 мин и затем на 15-20 мин замачивают в одном из специальных моющих растворов, подогретом до 500С. Шприцы обрабатывают в разобранном виде.
После замачивания инструменты моют в том же растворе ершами, щётками, затем в течение 5 мин ополаскивают тёплой водой и прополаскивают в дистиллированной воде. После этого инструменты и шприцы помещают в суховоздушный стерилизатор при температуре 850С для высушивания, после чего они готовы к стерилизации.
· Инструменты и шприцы, загрязнённые гноем или кишечным содержимым, предварительно помещают в эмалированные ёмкости с 0,1% раствором диоцида на 30 мин. Затем в этом же растворе их моют ершами, щётками, ополаскивают проточной водой и опускают в один из моющих растворов, проводя дальнейшую обработку по описанной выше методике. Инструменты после операции, проведённой у больного с анаэробной инфекцией, замачивают в растворе, состоящем из 6% раствора пероксида водорода и 0,5% раствора моющего средства, затем моют щёткой в этом же растворе и кипятят 90 мин. Лишь после этого инструменты готовят к стерилизации так же, как неинфицированные инструменты. Через 1 сут. (время для прорастания спор) их подвергают автоклавированию.
· Стерилизацию игл проводят вынужденно, когда нет возможности применить иглы разового использования. Пункционные, инъекционные иглы после употребления промывают с помощью шприца тёплой водой, а затем 1% раствором натрия гидрокарбоната, канал иглы прочищают мандреном, промывают 0,5% раствором аммиака и водой. После этого иглу со вставленным мандреном кипятят в течение 30 мин в 2% растворе натрия гидрокарбоната, а через 8-12 ч – повторно в дистиллированной в течение 40 мин и высушивают, после чего канал иглы просушивают путём продувания диэтиловым эфиром или спиртом с помощью шприца либо резиновой груши.
Иглы, загрязнённые гноем, тщательно моют, просвет промывают проточной водой; затем помещают на 1 ч в дезинфицирующий раствор, дополнительно промывая канал с помощью шприца или резиновой груши, и подвергают такой же дальнейшей обработке, как не загрязнённые гноем иглы.
· Системы для трансфузии используют разовые, стерилизованные в заводских условиях. Систему многоразового использования сразу после переливания крови или лекарственного препарата разбирают – разъединяют стеклянные части, капельницу и резиновые трубки, тщательно промывают проточной водой, разминая пальцами резиновую трубку. Части системы опускают на 2 ч в подогретый до 60оС специальный раствор, содержащий 1% раствор натрия гидрокарбоната и 1% раствор аммиака. Затем части системы промывают проточной водой и кипятят в дистиллированной воде 30 мин, вновь промывают водой, разминая резиновые трубки, и повторно кипятят 20 мин в дистиллированной воде. После этого систему монтируют и упаковывают для стерилизации.
· Резиновые перчатки используют перчатки разового пользования, стерилизованные в заводских условиях. При необходимости повторного использования перчатки, загрязнённые кровью, моют, не снимая с рук, проточной водой до полного удаления крови, просушивают полотенцем и помещают на 30 мин в 0,5% раствор аммиака либо в моющий и дез. раствор. Затем тщательно моют проточной водой, вывешивают на веревке для просушивания, после чего упаковывают для стерилизации.
Резиновые перчатки, загрязнённые гноем или кишечным содержимым, подлежат уничтожению. При крайней необходимости их моют в проточной воде и помещают в моющий и дез. раствор на 1 час, ополаскивают проточной водой и упаковывают для стерилизации. Эти перчатки могут использоваться для работы в гнойной перевязочной.
Для контроля полноты удаления крови с предметов, прошедших предстерилизационную обработку, используют бензидиновую пробу: на предмет наносят по 3 капли 1% раствора бензидина и пероксида водорода. Появление сине-зелёной окраски указывает на следы крови, оставшейся на предметах. В этом случае необходима повторная обработка.
Укладка и подготовка к стерилизации – для стерилизации в сухожаровых стерилизаторах инструменты помещают в металлические коробки, укладывая их вертикально в один слой. Шприцы в разобранном виде заворачивают в 2 слоя специальной плотной бумаги. Крышки от коробок стерилизуют рядом.
· Для стерилизации паром под давлением в паровых стерилизаторах (автоклавах) инструменты заворачивают в вафельное полотенце или хлопчатобумажную ткань в виде пакета и укладывают на металлический поднос или сетку. Для конкретных типичных операций набор инструментов подготавливают заранее, укладывают на специальную сетку и заворачивают в простыню в виде пакета.
Цилиндр и поршень шприца укладывают отдельно в марлевые салфетки и заворачивают в кусок хлопчатобумажной ткани, что помещают в стерилизационную коробку (бикс).
При массовой стерилизации шприцев в автоклавах используют специальную укладку, сшитую из хлопчатобумажной ткани, с карманами. В карманы помещают шприцы в разобранном виде, рядом – иглы и пинцет. В каждой укладке содержится до 5 шприцев.
· Сухие резиновые перчатки пересыпают тальком (снаружи и внутри), прокладывают марлевыми салфетками, попарно заворачивают в салфетку и укладывают в отдельный бикс.
· Собранные системы для переливания крови сворачивают в виде 2-3 колец, не допуская перегиба резиновых трубок, заворачивают в большую марлевую салфетку, затем – в вафельное полотенце и укладывают в биксы.
Стерилизацию инструментов, шприцев, игл, стеклянной посуды проводят в сухожаровых шкафах -стерилизаторах. Предметы свободно укладывают на полках стерилизатора в металлических коробках. При открытой дверце доводят температуру до 80-85 °С и в течение 30 мин просушивают – удаляют влагу с внутренних поверхностей шкафа и стерилизуемых предметов. Затем дверцу закрывают, доводят температуру до заданной (180 °С), и стерилизуют в течение 60 мин. После отключения системы подогрева и снижения температуры до 70-50 °С открывают дверцу шкафа и стерильным инструментом закрывают крышками металлические коробки с инструментами. Через 15-20 мин после полного охлаждения камеру разгружают.
· Хирургические инструменты и шприцы стерилизуют в течение 20 мин при 2 атм, что соответствует температуре 132,9 С. Время начала стерилизации отсчитывают с момента достижения соответствующего давления.
· Резиновые перчатки, системы для переливания крови, резиновые дренажные трубки стерилизуют при 1,1 атм (температура пара 120 °С) в течение 45 мин. При разгрузке автоклава закрывают отверстия в биксах.
Методы стерилизации в сухожаровых и паровых стерилизаторах следует рассматривать как основные.
Метод стерилизации кипячением применяют в небольших лечебных учреждениях, где нет централизованной стерилизационной. Используют стационарные или портативные электрические кипятильники, в которых можно стерилизовать инструменты, шприцы, иглы, предметы из стекла, резиновые дренажи, катетеры, перчатки.
· В кипятильник наливают дистиллированную воду, для повышения температуры кипения воды и разрушения оболочки бактерий добавляют 20 г натрия гидрокарбоната на 1 л воды. На дно кипятильника укладывают тонкий простёганный слой из ваты с марлей, чтобы выпадающие соли в виде накипи оседали на нём.
· Шприцы и иглы стерилизуют отдельно от инструментов, в разобранном виде (кипячением в дистиллированной воде), в течение 45 мин. Шприцы и иглы для люмбальной пункции и внутривенных вливаний кипятят в дважды дистиллированной воде.
· Инструменты, шприцы и иглы, загрязнённые гноем, каловыми массами, после специальной предварительной обработки стерилизуют кипячением в течение 90 мин в отдельном кипятильнике.
· Инструменты, шприцы и иглы, применяемые у больных с газовой гангреной, подлежат тщательной обработке и последующей дробной стерилизации кипячением.
Основной метод стерилизации изделий из резины (дренажей, катетеров, перчаток) – автоклавирование. В исключительных случаях их подвергают кипячению в течение 15 мин.
Стерилизацию инструментов и предметов, не подлежащих термической обработке (эндоскопов, торакоскопов, лапароскопов, аппаратов и т.д.), осуществляют в специальном газовом стерилизаторе ГПД-250. Камеру наполняют окисью этилена. Время экспозиции – 16 ч при температуре 180С. Стерилизация может проводиться также смесью окиси этилена и бромида метилена при температуре 55 °С в течение 6 ч.
Стерилизация инструментов и оптических аппаратов (лапароскопов, торакоскопов) может быть проведена в спиртовом растворе хлоргексидина и первомуре. При такой стерилизации применяют металлические коробки с крышками, что предупреждает испарение препарата и загрязнение воздуха помещений; при отсутствии специальной посуды используют эмалированную или стеклянную.
В экстренных случаях, когда невозможно обеспечить стерилизацию инструментов ни одним из указанных способов, используют метод обжигания. В металлический тазик или лоток наливают 15-20 мл спирта, несколько инструментов укладывают на дно и поджигают спирт. Метод обжигания недостаточно надёжен, пожаро- и взрывоопасен, поэтому к нему прибегают в исключительных случаях, строго соблюдая меры пожарной безопасности.
После предстерилизационной подготовки инструменты погружают в 96% раствор этанола на 30 мин или в тройной раствор на 3 ч. Допускается лишь краткосрочное кипячение режущих инструментов.
Скальпели укладывают в отдельную сетку, их лезвия обёртывают марлей и кипятят в дистиллированной воде в течение 10 мин, затем помещают в 96% раствор этанола на 30 мин.
Хранение стерильного материала – в специальном помещении. Стерильность материала в биксах сохраняется в течение 48 ч. Если материалы были помещены в полотняные упаковки и для стерилизации уложены в биксы, они могут храниться в этих биксах до 3 сут. При централизованной стерилизации шприцы сохраняют стерильность в течение 25 дней.
Стерилизация перевязочного материала, операционного белья:
I – Предстерилизационная подготовка материала
К перевязочному материалу относятся марлевые шарики, салфетки, тампоны, турунды, бинты. Применяют их во время операции и перевязки с целью осушения раны, остановки кровотечения, дренирования или тампонады раны. Перевязочный материал готовят из марли и ваты, реже – из вискозы и лигнина. Он должен обладать следующими свойствами:
1) быть биологически и химически интактным, не оказывать отрицательного влияния на процессы заживления;
2) обладать хорошей гигроскопичностью;
3) быть минимально сыпучим;
4) быть мягким, эластичным, не травмировать ткани;
5) легко стерилизоваться и не терять при этом своих свойств;
6) быть дешёвым в производстве (с учётом большого расхода материала).
Перевязочный материал готовят из марли, предварительно разрезанной на кусочки. Марлю складывают, подвёртывая края внутрь, чтобы не было свободного края. Материал заготавливают впрок, пополняя его запасы по мере расходования. Перевязочный материал, кроме бинтов, не загрязнённых кровью, после применения сжигают.
К операционному белью относятся халаты хирургические, простыни, полотенца, маски, шапочки, бахилы. Операционное бельё многоразового пользования должно иметь специальную метку и сдаваться в стирку отдельно от другого белья, в специальных мешках. У халатов не должно быть карманов, поясов; простыни должны был подшиты. Халаты, простыни, пелёнки, полотенца для стерилизации складывают в виде рулонов, чтобы их легко можно было развернуть при использовании.
II – Укладка и подготовка материала к стерилизации.
Перевязочный материал и операционное бельё укладывают в биксы. При отсутствии биксов допускается стерилизация в полотняных мешках.
· При универсальной укладке в бикс (мешок) помещают материал, предназначенный для одной небольшой типичной операции.
· При целенаправленной укладке в бикс (мешок) закладывают необходимый набор перевязочного материала и операционного белья, предназначенного для конкретной операции.
· При видовой укладке в бикс укладывают определённый вид перевязочного материала или белья.
Материал укладывают неплотно, чтобы обеспечить доступ пара, внутрь помещают индикаторы режима стерилизации, края простыни заворачивают, бикс закрывают крышкой и защёлкивают замок. К крышке бикса прикрепляют бирку из клеёнки с указанием даты стерилизации и фамилии осуществлявшего её.
При стерилизации в мешке перевязочный материал или бельё укладывают неплотно, мешок завязывают тесёмками, опускают его в другой такой же мешок и завязывают. Операционная сестра развязывает внутренний мешок стерильными руками, раскрывает его и извлекает материал.
III – Стерилизация
К работе с автоклавом допускаются лица, сдавшие технический минимум по эксплуатации автоклава и имеющие соответствующее разрешение. Необходимо соблюдать общие правила техники безопасности:
· обязательно заземлять паровой стерилизатор с электрическим подогревом;
· не приступать к работе на неисправном аппарате;
· во время работы не оставлять аппарат без присмотра;
· не доливать воду в воронку во время работы стерилизатора;
· по окончании стерилизации отключать нагреватель от сети и прикрывать вентиль впуска пара в стерилизационную камеру из парообразователя;
· открывать крышку стерилизационной камеры только после того, как стрелка манометра опустится до нуля.
Перевязочный материал и операционное бельё стерилизуют в течение 20 мин при давлении 2 атм.
IV – Хранение стерильного материала
По окончании стерилизации и сушки белья стерилизационную камеру разгружают, биксы вынимают, сразу закрывают решётку и переносят их на специальный стол для стерильного материала. Хранят биксы в шкафах под замком в специальной комнате. Материал и бельё, стерилизованные в мешках, хранят не более 24 ч.
Контроль стерильности:
· Прямой способ – бактериологический: посев с перевязочного материала и белья или использование бактериологических тестов. Посев производят следующим образом: в операционной вскрывают бикс, маленькими кусочками марли, увлажнённой изотоническим раствором хлорида натрия, несколько раз проводят по белью, после чего кусочки марли опускают в пробирку, которую направляют в бактериологическую лабораторию. Пробирки вкладывают вглубь бикса, а по окончании стерилизации извлекают и направляют в лабораторию. Отсутствие роста микробов свидетельствует о стерильности материала. Этот тест проводят 1 раз в 10 дней.
· Непрямые способы контроля стерильности материала применяют постоянно при каждой стерилизации. Для этого используют вещества с определённой точкой плавления: бензойную кислоту (120 С), резорцин (119 С), антипирин (110 С). В бикс между слоями стерилизуемого материала закладывают 1-2 ампулы. Расплавление порошка и превращение его в сплошную массу указывают на то, что температура в биксе была равна точке плавления контрольного вещества или превышала её. Более объективным из непрямых методов контроля режима стерилизации является термометрия. В каждый бикс между стерилизуемым материалом укладывают 1-2 термометра. Их показатели отражают максимальную температуру, но не указывают время экспозиции.
Стерилизация аппаратов для ингаляционного наркоза
Аппараты для искусственной вентиляции лёгких и ингаляционного наркоза могут быть причиной перекрёстного инфицирования больных и распространения внутрибольничной инфекции (пневмонии, бронхита, трахеита, фарингита).
Для предупреждения подобных осложнений необходимо выполнять следующие основные рекомендации.
1. Эндотрахеальные трубки должны быть разового пользования, стерилизация их должна производиться холодным способом в заводских условиях.
2. После наркоза, проведения искусственной вентиляции лёгких аппараты, элементы дыхательного контура подвергают обработке антисептическими химическими средствами. Аппараты обрабатывают в собранном виде. Может быть использован 0,5% спиртовой раствор хлоргексидина. Смесь заливают в испаритель наркозного аппарата или увлажнитель аппарата для искусственной вентиляции лёгких. Вентиляцию проводят по полузакрытому контуру в течение 1 ч. Затем остатки антисептика удаляют, аппарат проветривают в течение 15 мин по полуоткрытому контуру. В качестве антисептика в подобных ситуациях можно использовать 40% водный раствор формальдегида.
3. Если аппараты были применены у больных с гнойными заболеваниями, производят разборку дыхательного контура. Все детали обязательно промывают под струёй тёплой воды, затем замачивают в горячем моющем растворе на 15 мин. В этом же растворе каждую деталь моют ватно-марлевым тампоном, после чего прополаскивают проточной, а затем дистиллированной водой. Собственно, стерилизационную обработку деталей проводят 0,5% водным раствором хлоргексидина, помещая их в ёмкости на 30 мин, или 3 % раствором пероксида водорода (80 мин), или 3% раствором формальдегида (30 мин).
После обработки антисептиком детали тщательно промывают стерильной водой в течение 10 мин, сушат и хранят в асептических условиях до использования.
Стерилизация эндоскопической аппаратуры
Основные этапы стерилизации эндоскопических приборов и инструментов – их механическая очистка, промывание, предстерилизационная обработка и стерилизация, просушивание и хранение.