Результаты специфического подавления ретракции кровяного сгустка

Нами, на основании аллергического исследования, были отобраны реагирующие и не реагирующие на туберкулин животные для испытания значимости ретракции кровяного сгустка по методике М.В. Харитонова (1998). Данные представлены в таблице 8.

Анализ таблицы 8 показывает, что индекс ретракции после внутрикожного введения ППД – туберкулина составлял в контрольной группе 0,60 до 0,72 мл, двукратного 0,58 – 0,67 мл. И внутривенного введения 0,58 – 0,72 мл.

Таблица 8 - Результаты специфического подавления ретракции кровяного сгустка

В опытно группе после внутрикожного введения ППД – туберкулина данный показатель установили у 7 животных 0,40 – 0,59 мл, двукратного введения 0,43 – 0,50 мл, то есть он имеет меньшую величину, чем у контрольных животных.

Индекс ретракции после внутривенного введения ППД – туберкулина составил у 6 животных от 0,46 – 0,52 мл. Из таблицы видно, что в опытной группе у 7 коров индекс ретракции меньше 0,6 мл.

Таким образом, у опытных животных (реагирующих на внутрикожное, двукратное и внутривенное введение аллергена) ретракция кровяного сгустка имела меньшую величину (от 0,40 до 0,53 мл). Данные животные убиты с диагностической целью, при послеубойном осмотре изменений характерных для туберкулеза не обнаружено. В лаборатории кафедры эпизоотологии провели бактериологический анализ проб биоматериала от 7 реагирующих на туберкулин коров, у которых индекс ретракции составлял 0,40; 0,43; 0,46; 0,50; 0,51; 0,53 (2 головы). Посевы проводили на твердую среду Мордовского и на полужидкую среду Школьниковой (для выделения Л – форм микобактерий).

Бактериологический анализ биоматериалов

Основным методом диагностики туберкулеза является бактериологический, который включает микроскопию мазков, выделение чистой культуры.

Бактериологические исследования биоматериала проводят с целью установления диагноза и в период неблагополучия хозяйств, для контроля эффективности мероприятий.

По истечении срока наблюдения из культур готовили мазки, окрашивали по Циль – Нильсену и микроскопировали. Бактериальные формы были представлены палочками, располагающимися одиночно или кучками, Л – формы – в виде малых и больших шароподобных структур, неравномерно окрашенных в синий или фиолетовый цвет.

Таблица 9 - Результаты бактериологических исследований биоматериала

Как видно в таблице 9, из проб биоматериала у всех 7 убитых животных выделены микобактерии. В 3 случаях бактериальные культуры, в 4 случаях Л – формы.

Для дальнейшего изучения было отобрано 4 культуры Л – форм. Учитывая, что основной биологической особенностью их является реверсия в бактериальное состояние, нами проведено пассирование культур на плотные и полужидкую среду Школьниковой (всего три пассажа). В обычное бактериальное состояние реверсировали 2 культуры, 2 культуры рост утратили на первом – втором пассаже.

Видовую принадлежность у выделенных бактериальных культур и культур – ревертантов Л – форм изучили, используя культуральный и биохимический методы. Учитывая, что основным возбудителем туберкулеза крупного рогатого скота является M. bovis дифференциацию этих видов в первую очередь проводили с использованием следующих тестов:

- характер роста на плотных средах;

- скорость роста при разных температурах;

- образование пигмента на свету и в темноте;

- рост на средах с салициловым натрием.

По результатам идентификации все культуры отнесены к атипичным микобактериям. Бактериальные культуры были представлены: M. terrae (2), M. sсrofulaccum, M. intracellularae, M. smegmatis.

Таблица 10 - Результаты биохимической идентификации микробактерий, выделенных от животных благополучных хозяйств

Таким образом, из биоматериала коров реагирующих на туберкулин нами выделены атипичные микобактерии и их Л – формы.