Существуют экспериментальные и клинические методы изучения слюноотделения.

Динамометрия

Для исследования динамометрии используют динамометры: кистевой и становой.

Испытуемый с помощью кистевого динамометра определяет произвольную мышечную силу любой руки, а также становую силу с помощью станового динамометра. Измерения в каждом случае производится 3 раза, за показатель силы берется наибольшая величина. После выполнения динамической работы (нашагивание в максимальном темпе в течении 30 секунд) определяются повторно показатели кистевого и станового динамометра. После 10-минутного отдыха выполняется статическая работа (удержание угла в течении максимально возможного времени). Сразу по окончанию мышечной деятельности снова изменяется максимальная произвольная сила с помощью кистевого и станового динамометра (СП), причём с помощью кистевого динамометра измеряется сила той же руки. Далее вычисляется коэффициент силовой выносливости, как отношение максимального мышечного усилия до (П) и после выполнения физической нагрузки (Н). Квыносл.=Ппокой/Нпосле работы. При К>1 становая выносливость низкая,

При К<1 высокая.

2. Принципы анализа электрокардиограммы. Вначале определяют интервал Р – Q, т.е. время необходимое для проведения возбуждения от предсердий к желудочкам. Для этого, зная скорость продвижки ленты (к примеру 25 мм в сек) определяют время прохождения 1 мм ленты (в данном случае 1:25 = 0,04 сек). Умножая количество мм от Р до Q на 0,04 получаем интервал Р-Q (в норме он равен 0,16 – 0,18 сек).

Затем определяем высоту (вольтаж) зубцов R. Исходя из данных калибровки определяем значение 1 мм (например 1 контрольный милливольт дал высоту в 10 мм, значит один мм равен 0,1 милливольта). Умножая высоту зубца R на 0,1 мв получаем вольтаж зубца. В норме вольтаж зубца R составляет 0,6 – 1,6 мв.

3) МЕТОДЫИССЛЕДОВАНИЯ ФУНКЦИИ СЛУХОВОГО АНАЛИЗАТОРА

• Субъективные методики.
• Речевое исследование слуха.
• Исследование шепотной и разговорной речи.
• Методика. Обследуемого ставят на расстоянии 6 м от себя. Исследуемое ухо направлено в сторону врача, противоположное ухо закрывает медицинская сестра, прижимая козелок к отверстию слухового прохода II пальцем, слегка потирая этот палец III-м. Пациент не должен смотреть на врача во избежание чтения с губ. Врач шепотом, используя воздух, оставшийся в легких после нефорсированного выдоха, произносит слова с низкими звуками, затем с высокими; пациент их повторяет.
• Норма: шепотная речь – 6 м, разговорная речь – 20 м.
• Исследование камертонами.
• Исследование воздушной проводимости (начинают камертонами С64, С128). Методика. Звучащий камертон, удерживая за ножку двумя пальцами, подносят к наружному слуховому проходу обследуемого на расстояние 0,5 см. Секундомером измеряют время, в течение которого обследуемый слышит звучание. После того, как он перестает слышать, камертон следует быстро отдалить от уха и вновь сейчас же приблизить, в результате обычно обследуемый еще несколько секунд слышит звук.
• Исследование костной проводимости (камертон С128). Методика. Звучащий камертон ставят перпендикулярно ножкой на площадку сосцевидного отростка, продолжительность восприятия измеряют секундомером.
• Опыты с камертоном.
• Ринне (R).
• Методика. Звучащий камертон приставляют ножкой к площадке сосцевидного отростка, затем, после прекращения восприятия звука, подносят к наружному слуховому проходу.
• R+ - воздушная проводимость звука в 2 раза превышает костную – норма, при укорочении абсолютных цифр – нарушение звуковосприятия.
• R- - кондуктивная тугоухость.
• Вебера (w).
• Методика. Звучащий камертон приставляют к темени обследуемого, чтобы ножка находилась посередине головы, а бранши – во фронтальной плоскости.
• Норма – слышит звук камертона в середине головы или одинаково в обоих ушах.
• Латерализация в больное ухо – одностороннее нарушение звукопроведения.
• Латерализация в здоровое ухо – одностороннее нарушение звуковосприятия.
• Желле (G).
• Методика. Звучащий камертон приставляют к сосцевидному отростку и одновременно пневматической воронкой сгущают воздух в наружном слуховом проходе.
• G+ - в момент компрессии снижение восприятия за счет сдавления звукопроводящей системы – норма, нарушения звуковосприятия.
• G- - изменения восприятия не происходит – отосклероз.
• Бинга (Bi).
• Методика. Костная проводимость исследуется сначала при открытом наружном слуховом проходе, а затем при закрытом путем прижатия козелка к ушной раковине.
• Норма – удлинение звукопроведения через кость при закрытом слуховом проходе.
• Без изменений – нарушение звукопроведения.
• Федеричи.
• Методика. Звучащий камертон ставят вначале на сосцевидный отросток, после прекращения восприятия переставляют на козелок.
• Норма – более длительное восприятие звука с козелка.
• Более длительное костное проведение – нарушение звукопроведения.
• Аудиометрия. Основные виды – тональная, речевая, шумовая.
• Тональная пороговая аудиометрия.
• Методика. Определение пороговой чувствительности к восприятию звуков различных частот, подаваемых через воздушные наушники или костный телефон.
• Признаки нарушения звукопроведения:
• повышение порогов слуха по воздушной проводимости преимущественно в диапазоне низких частот;
• сохранение порогов по костной проводимости;
• костно-воздушный разрыв между кривыми.
• Признаки нарушения звуковосприятия:
• воздушная и костная проводимость страдают в одинаковой степени;
• костно-воздушный разрыв практически отсутствует (тип кривых слипчивый, нисходящий);
• в начальных стадиях страдает преимущественно восприятие высоких тонов;
• наличие обрывов кривых (отсутствие восприятия на те или иные частоты), "островков" слуха (сохранение восприятия 1-2 частот).
• Смешанная тугоухость:
• наряду с повышением порогов при костном проведении имеет место костно-воздушный интервал.
• Тональная надпороговая аудиометрия – выявляет ФУНГ (феномен ускоренного нарастания громкости): наряду с понижением остроты слуха имеется повышенная чувствительность к громким звукам, при этом нарастание восприятия громкости происходит так быстро, что достигает нормы раньше, чем при здоровом ухе.
• Косвенные признаки ФУНГ:
• жалобы на непереносимость громких звуков;
• шепотно-разговорная диссоциация: шепотную речь пациент не воспринимает или воспринимает у раковины, а разговорную слышит на расстоянии более 2 м;
• при проведении опыта Вебера – смена или внезапное исчезновение латерализации восприятия звука;
• при камертональном исследовании – внезапное прекращение слышимости камертона при медленном отдалении его от больного уха.
• Исследование слуховой чувствительности к ультразвукам: при поражении улитки восприятие ультразвука и звуков речевых частот часто не совпадает, что уточняет характер поражения. Кроме того, можно уточнить латерализацию, далее, клинически значимы ее расхождения (обычных звуков и ультразвуков).
• Речевая аудиометрия: через наушники, через костный телефон, в свободном звуковом поле.
• Объективные методики: оценка безусловных рефлексов на звук (расширение зрачков – улитково-зрачковый, закрывание век – ауропальпебральный или мигательный, кожно-гальваническая и сосудистые реакции).
• Импедансометрия:
• тимпанометрия – регистрация импеданса барабанной перепонки (оценка подвижности тимпано-оссикулярной системы среднего уха и проходимость слуховой трубы);
• регистрация рефлекса внутриушных мышц на звуковое раздражение барабанной перепонки (оценка слуховой функции).
• Компьютерная аудиометрия.
• Отоакустическая эмиссия – звук, сформировавшийся в результате активных механических колебаний наружных волосковых клеток.

 

 

4) Классические исследования условно-рефлекторной деятельности организма, заложившие основу учения И. П. Павлова о высшей нервной деятельности, были проведены с использованием рефлексов слюноотделения (эффекторное звено рефлекторной дуги — слюнные железы). Методика достаточно простая и сводится к следующей схеме. Для выработки положительного (или отрицательного) пищевого условного рефлекса животному предъявляют индифферентный по отношению к безусловному рефлексу слюноотделения стимул (например, световой или звуковой раздражитель) с последующим или одновременным подкреплением его безусловным раздражителем (пища). Для сбора слюны у животного предварительно производят операцию выведения протока слюнной железы (околоушной, подъязычной или подчелюстной) на наружную поверхность кожи. Характеристики как безусловного, так и вырабатываемого на его основе условного рефлекса изучают путем анализа качественного или количественного состава выделяемой слюны.

 

При выработке оборонительного условного рефлекса (например, на болевое раздражение) в качестве подкрепляющего безусловного рефлекса в этой схеме используют электрическое раздражение кожи.

5 Техника взятия крови. Кожа пальца левой руки обрабатывается ватным тампоном, смоченным спиртом, а затем эфиром. Стерильным одноразовым скарификатором прокалывается кожа пальца. Выступившую каплю крови убирают сухим ватным тампоном. В следующую каплю крови погружается кончик смесителя или капилляра и набирается кровь. По окончании взятия крови кожа пальца обрабатывается спиртом, а затем желательно обработать настойкой йода.

6 Подсчет эритроцитов.. Для подсчета эритроцитов необходимо: микроскоп, счетная камера Горяева, смеситель для красной крови, раствор для разбавления крови (3% раствор поваренной соли). Вначале к боковым площадкам камеры Горяева притирают покровное стекло до появления цветных радужных колец. Набирают кровь в смеситель для эритроцитов до метки 1,0 или 0,5 в зависимости от степени разведения крови (в 200 или 100 раз), затем в смеситель набирают 3% раствор NaC1 до метки 101. Зажимают смеситель с обеих сторон пальцами встряхивают его в течение нескольких минут. Выпускают из смесителя 2-3 капли жидкости и следующую каплю помещают на среднюю площадку счетной камеры. Эритроциты считают в 5 больших неразделенных квадратах (или в 80 малых квадратах) по правилу Егорова (считают форменные элементы в пределах большого квадрата, лежащие в самом квадрате и на верхней и правой границах квадрата). Для окончательного расчета количества эритроцитов используют формулу:

Э = эритр. х 4000 х 100 (200)

Нормы содержания эритроцитов у женщин - 4,0-4,5 х 10 в 12 степени на литр

у мужчин - 4,5-5,0 х 10 в 12 степени на литр

7 Определение гемоглобина. Для определения гемоглобина колориметрическим методом используется гемометр Сали, который состоит из штатива, градуированной пробирки, стеклянной палочки и пипетки. В боковых пробирках гемометра находится раствор солянокислого гематина, содержание гемоглобина в них оптимальное – 100%, т.е. 16,67 г/% или 166,7 г/литр. В среднюю пробирку наливается 0,1 нормальный раствор соляной кислоты до нижней круговой метки (до цифры 2). В капилляр гемометра набирается кровь до единственной круговой метки- 20 куб.мм. Затем необходимо постукать по пробирке и оставить на 5-10 минут для образования солянокислого гематина. Добавляя дистиллированную воду с помощью пипетки доводят цвет жидкости в средней пробирке до стандартного (цвет в боковых пробирках) определяют содержание гемоглобина в грамм на литр. Нормы содержания гемоглобина у женщин - 120-140 г/л, у мужчин - 130-160 г\л.

 

8 Определение СОЭ. Для определения скорости оседания эритроцитов необходимо: прибор Панченкова (штатив, капилляр, часовое стекло), цитрат натрия (5% р-р лимонно-кислого натрия). Вначале промывают капилляр раствором цитрата натрия, затем набирают раствор до метки 50 (или буква Р) и выдувают на часовое стекло. Набирают кровь дважды до метки К (или 0) и также выдувают на часовое стекло. Перемешивают содержимое и набирают в капилляр до метки К и ставят в штатив на 1 час. По истечении часа наблюдают величину верхнего светлого слоя жидкости – плазмы крови. По количеству мм слоя плазмы и выражают скорость оседания эритроцитов. Скорость оседания неодинакова в течение часа: вначале СОЭ ускорено, затем замедлено и в конце вновь происходит ускорение оседания эритроцитов.

Нормы СОЭ: у женщин от 2 до 15 мм/час, у мужчин 1-10 мм /час.

 

9 Подсчет лейкоцитов. Для подсчета лейкоцитов необходимо: микроскоп, счетная камера Горяева, смеситель для белой крови, раствор для разбавления крови (5% р-р уксусной кислоты, окрашенной метиленовой синью). Вначале к боковым площадкам камеры Горяева притирают покровное стекло до появления цветных радужных колец. Набирают кровь в смеситель для лейкоцитов до метки 1,0 или 0,5 в зависимости от степени разведения крови (в 20 или 10 раз), затем в смеситель набирают 5% р-р уксусной кислоты до метки 11. Зажимают смеситель с обеих сторон пальцами встряхивают его в течение нескольких минут. Выпускают из смесителя 1-2 капли жидкости и следующую каплю помещают на среднюю площадку счетной камеры. Лейкоциты считают в 100 больших (или в 1600 малых квадратах) неразделенных квадратах по правилу Егорова (считают форменные элементы в пределах большого квадрата, лежащие в самом квадрате и на верхней и правой границах квадрата). Для окончательного расчета количества лейкоцитов используют формулу:

Л = лейк.х 4000 х 10(или 20).

1600

Нормы содержания лейкоцитов - 4 - 9 х 10 в 9 степени на литр.

10) Для работы необходимы: приготовленный ранее мазок крови, окрашенный по Романовскому-Гимза, микроскоп, иммерсионное масло. Объект исследования –человек.

Проведение работы: Мазок крови, окрашенный по Романовскому-Гимза помещают под микроскоп с иммерсионным объективом и подсчитывают разные формы лейкоцитов. При этом гранулоциты и моноциты располагаются в начале и в конце мазка, а посередине, как правило, располагаются лимфоциты. Наиболее равномерно лейкоциты разных форм располагаются в углах мазка. Подсчет лейкоцитов производят при помощи зигзагоподобного перемещения стекла, чтобы дважды не считать одни и те же клетки. В каждой из 4-х частей мазка необходимо подсчитать не менее 25 лейкоцитов. Всего их в мазке насчитывается 100, что и принимается за 100%.

11. Определение групп крови в системе АВО. Для определения группы крови необходимы стандартные сыворотки (плазма, лишенная белка фибриногена) 1,2,3 групп крови. На предметное стекло капают по одной капле соответствующей стандартной сыворотки (во избежание смешивания сывороток между собой пользуются меченой пипеткой). Берут кровь углами второго предметного стекла и помещают в каждую каплю сыворотки (соотношение крови и сыворотки должно быть примерно 1:10). Группу крови определяют по наличию реакции агглютинации. Если реакция агглютинации не произошла ни в одной капле сыворотки – значит группа крови 1, если реакция произошла 1 и 3 капле сыворотки – это группа крови 2. Если реакция произошла в 1 и 2 каплях – группа 3. И наконец, если реакция произошла во всех трех каплях сыворотки – это значит кровь имеет 4 группу.

Определение групп крови с помощью цоликлонов. На предметное стекло наносятся индивидуальной пипеткой по одной большой капле цоликлоны анти-А, анти-В и анти-АВ под соответствующими подписями. Рядом с каплями антител наносят по одной маленькой капле исследуемой крови. Смешивают кровь с реагентом с помощью второго предметного стекла. Наблюдают за ходом реакции в течение 3 минут. Положительный результат выражается в реакции агглютинации эритроцитов. Если ни в одной капле цоликлонов не произошла реакция агглютинации эритроцитов – значит кровь относится к 1 группе. Если агглютинация произошла с цоликлоном анти- А и анти- АВ – значит группа крови 2. Если агглютинация с цоликлоном анти-В и анти-АВ - тогда это группа крови 3. И наконец, если агглютинация эритроцитов имеет место со всеми цоликлонами - тогда речь идет о 4 группе крови.

12 Определение резус-принадлежности крови. Используется специфическая антирезусная сыворотка крови. На стекло пипеткой наносят раздельно по одной капле антирезусной и контрольной сывороток. Стеклянной палочкой вносят кровь в обе капли сывороток. Через 5 минут наблюдают результат.

13) При некоторых заболеваниях крови человека нарушается соответствие между содержанием гемоглобина и количеством эритроцитов. Насыщение эритроцитов гемоглобином изменяется. Для того, чтобы судить, нормально ли насыщен гемоглобином каждый эритроцит, используют условную величину – цветной показатель крови.

Для его вычисления количество гемоглобина в крови, выраженное в относительных процентах (по отношению к стандарту 16,7 г%, принимаемому за 100 %), делят на три первые цифры числа эритроцитов и полученное значение умножают на 5. Такой способ вычисления рассчитан на то, что в идеальных условиях (при содержании гемоглобина 100% и эритроцитов – 5 млн в мм³ в крови) цветной показатель соответственно равен (100:500)×5=1.

Для расчета величины цветового показателя (ЦП) необходимо использовать значения, полученные предшествующих заданиях: процентное содержание гемоглобина (Г, г%) в крови и (Э) в 1 мм³ крови, из которого используют первые три цифры:

ЦП = Г г% _х5

Первые три цифры Э

Если ЦП меньше единицы, то такое явление называется гипохромазией; больше единицы – гиперхромазией.

 

14 Определение времени свертывания крови по Сухареву и Альтгаузену.

По Альтгаузену: на тщательно промытое, сухое и согретое ладонью до температуры тела стекло наносят 2-3 капли крови. Через каждые полминуты проводят через кровь скарификатором, пока за иглой скарификатора не потянется первая нить фибрина.

По Сухареву: набирают в капилляр столбик крови высотой 25-30 мм, отмечают по секундомеру время. Наклоном капилляра переводят кровь на середину капилляра. Держа капилляр двумя пальцами, покачивают его на 30-45 градусов в обе стороны. Начало свертывания крови характеризуется замедлением движения крови при наклоне капилляра. Полное свертывание крови соответствует моменту полной остановки движения крови.

15 Спирография. Метод регистрации дыхательных объемов, позволяющий судить о показателях легочной вентиляции. После наложения на нос пациента зажимов включается протяжка ленты спирографа. Испытуемый в течение 3-4 мин. спокойно дышит.Вначале регистрируется дыхательный объем, затем по команде испытуемый производит максимально глубокий вдох и, не задерживая дыхание, максимально глубокий выдох. Затем осуществляется анализ и оценка спирографического исследования. Вычисляют дыхательный объем, резервный объемы вдоха и выдоха и наконец ЖЕЛ (жизненная емкость легких).

Спирометрия. Метод регистрации ЖЕЛ и составляющих ее объемов воздуха. ЖЕЛ – это наибольшее количество воздуха, которое может человек выдохнуть после максимального вдоха. В состав ЖЕЛ входит: дыхательный объем - объем вдыхаемого и выдыхаемого воздуха в покое (в среднем 500 мл); резервный объем вдоха - максимальный объем воздуха, который можно дополнительно вдохнуть после спокойного вдоха (в среднем 1500 – 1800 мл); резервный объем выдоха – максимальный объем воздуха, который можно выдохнуть после спокойного выдоха (в среднем 1000 – 1400 мл). Для работы протирают мундштук спирометра спиртом. Испытуемый делает максимально глубокий выдох в спирометр. По шкале определяют ЖЕЛ. Исследование повторяют несколько раз.

Пневмография. Это метод регистрации дыхательных движений. Позволяет определить частоту и глубину дыхания, а также соотношение продолжительности вдоха и выдоха.Манжетку от сфигмоманометра укрепляют на груди испытуемого и соединяют с помощью резиновых трубок с капсулой Марея. Писчик, укрепленный на капсуле, регистрирует кривые: во время вдоха кривая поднимается вверх, во время выдоха – опускается вниз.

 

16 Метод определения расхода энергии. Прямая и непрямая калориметрия.

Прямая калориметрия - это метод точного определения основного обмена (основной обмен означает расход энергии, необходимый для поддержания жизнедеятельности организма и постоянной температуры в условиях физиологического покоя) с помощью биокалориметров – герметизированных и хорошо теплоизолированных камер, по трубкам которых циркулирует вода. Тепло, выделяемое находящимся в камере человеком или животным, нагревает циркулирующую воду. По количеству протекающей воды и изменению ее температуры расчитывают количество выделенного организмом тепла. Однако это дорогостоящий метод и он широко не применяется на практике.

Непрямая калориметрия – это косвенное определение выделяемого тепла на основе учета динамики дыхательного газообмена. Состоит из 4 этапов: собирание выдыхаемого воздуха в газообменный мешок Дугласа; определение минутного объема дыхания с помощью газовых часов; анализ газового состава выдыхаемого воздуха; расчет по полученным данным газообмена расхода энергии за сутки. При этом определяется дыхательный коэффициент – отношение выделенного СО2 к поглощенному О2, находится калорический эквивалент кислорода при данном дыхательном коэффициенте. Умножая объем поглощенного за 1 мин. кислорода на калорический эквивалент кислорода находят расход энергии за минуту, за час, за сутки.

Определение основного обмена. Основным обменом называется расход энергии, необходимой для поддержания жизнедеятельности организма и постоянной температуры в условиях физиологического покоя. Его определяют в условиях полного мышечного покоя, натощак и при температуре комфорта (18-20 градусов С). Основной обмен зависит от пола, возраств, массы и длины тела. Величина основного обмена равна приблизительно 1 ккал на 1 кг массы тела в час или 1500-1700 ккал/сутки. Должный основной обмен определяют по формулам и таблицам.

 

17)Измерение АД прибором Рива-Рочи

 

Давление крови в артериях (АД) меняется на протяжении сердечного цикла: повышается при систоле и снижается при диастоле. Уровень АД и размах его циклических колебаний зависит от силы сердечных сокращений и от тонуса сосудов (главным образом, артериол), отражая состояние как производительности сердца (энергетический компонент), так и вегетативного тонуса (информационный компонент). На этом основывается практическое использование артериальной тонометрии в контроле за эффектом ФУ.

Общепринято измерение АД слуховым методом Короткова. Техника измерения состоит в следующем. На плечо накладывается менжетка специального прибора (сфингмоманометр, прибор Рива-Роччи, тонометр), соединенная с манометром и с насосом-грушей. На плечевую артерию в области локтевого сгиба накладывают фонендоскоп, с помощью которого улавливаются звуковые явления, тоны, возникающие в артерии, когда ток крови в ней становится прерывистым. Нагнетая воздух в манжетку, регистрируют уровни давления в ней при появлении и исчезновении тонов. Нижняя граница появления – исчезновения тонов соответствует АД диастолическому (Адд), а верхняя – систолическому – Адс.

В состоянии покоя норма для взрослых по Адс – 100-130 мм рт. ст., а по АДд – 60-80 мм рт ст. Имеется общая тенденция к повышению АД с увеличением возраста, которая на первом году жизни выражена сильно, а в последующие годы жизни очень слабо, меньше, чем индивидуальная вариативность.

 

18 Сфигмография, ее анализ. Сфигмография – это графическая регистрация артериального пульса с помощью сфигмографа. На кривой сфигмограммы различают восходящую часть кривой – анакроту и нисходящую часть – катакроту. На нисходящей части кривой различают дикроту. Анакрота соответствует систоле сердца, катакрота – диастоле. Дикротический подьем на кривой соответствует удару систолического обьема крови о захлопнувшиеся полулунные клапаны аорты при выбросе крови из сердца.

19. Электрокардиография, методика регистрации ЭКГ. Электрокардиография – это метод регистрации разности потенциалов в миокарде при его возбуждении. Разность потенциалов в миокарде возникает между возбужденным и невозбужденным участками миокарда (возбужденный участок приобретает электроотрицательный заряд, невозбужденный покоящийся участок сохраняет электроположительный заряд). Отделы сердца возбуждаются и сокращаются неодновременно, отсюда в сердечной мышце и возникает разность потенциалов. ЭКГ регистрируют с 3-х стандартных и грудных отведений. Больного укладывают на кушетке, кожу конечностей обрабатывают спиртовым раствором, салфетки смачивают гипертоническим раствором NaC1 и накладывают электроды по схеме. 1 стандартное отведение: правая рука + левая рука, 2 отведение: правая рука + левая нога, 3 отведение: левая рука + левая нога. На вход усилителя подается контрольный милливольт (калибровка прибора), регистрируется амплитуда кривой. Затем поочередно записывается ЭКГ с трех стандартных и грудных отведений.

Для регистрации и анализа электрокардиограммы необходимы следующие приборы: электрокардиограф, секундомер, 20% раствор поваренной соли, матерчатые прокладки, электроды, провода заземления.

Для проведения эксперимента необходимо уложить испытуемого на кушетку, наложить электроды, записать ЭКГ при 1, 2, 3 отведениях. Запись вести при скорости 50 мм/сек. После записи ЭКГ в покое отсоединить провода от электродов, не не снимая последних. Испытуемый выполняет степ-тест на скамейке высотой 30 см, с максимальной частотой в течении 30 секунд. После чего записывать ЭКГ во 2 отведении в течении 5 минут (на 1,3,5 минутах).

После этого проводят анализ ЭКГ, определяя высоту зубцов в мм, длительность интервалов в секундах, для этого величину интервалов в мм умножить на 0,02 секунды (при скорости записи 50 мм/сек). Рассчитать систолический показатель (СП) по формуле: СП=ОТ/R1 * 100%.

Определить положение оси сердца исходя из высоты зубца R в трех отведениях в состоянии покоя: R2>R1>R3- номограмма, R1>R2>R3-левограмма, R3>R2>R1-правограмма.

20) Сбалансированное питание. В настоящее время принята теория сбалансированного питания. Сбалансированное полноценное питание характеризуется оптимальным соответствием количества и соотношений всех компонентов пищи физиологическим потребностям организма (А. А. Покровский).

 

Принимаемая пища должна с учетом ее усвояемости восполнять энергетические затраты человека, которые определяются как сумма основного обмена, специфического динамического действия пищи и расхода энергии на выполняемую человеком работу.

 

В нашей стране принято выделять пять групп интенсивности труда у мужчин и четыре — у женщин

 

При регулярном превышении суточной энергетической ценности (калорийности) пищи над затратами энергии увеличивается количество депонированного в организме жира

В рационе должны быть сбалансированы белки, жиры и углеводы. Среднее соотношение их массы составляет 1:1,2:4, энергетической ценности — 15:30:55 %. Такое соотношение удовлетворяет энергетические и пластические потребности организма, компенсирует израсходованные белки, жиры и углеводы. Следовательно, должен быть приблизительный баланс между количеством каждого пищевого вещества в рационе и их количеством, утилизируемым в организме; их расход и соотношение зависят от вида и напряженности труда, возраста, пола и ряда других факторов.

Важно наличие в рационе витаминов и минеральных веществ, которые соотносятся (балансируются) с расходом и потребностями в них организма в зависимости от возраста, пола, вида труда, времени года и ряда других факторов, влияющих на обмен веществ.

 

В рациональном питании важны регулярный прием пищи в одно и то же время суток, дробность приема пищи, распределение ее между завтраком, обедом, ужином, вторым завтраком, полдником. При 3-разовом питании в сутки первые два приема составляют 2/з суточной энергетической ценности («калоража») пищи и ужин— '/з. Часто суточный рацион по энергетической ценности распределяется следующим образом: завтрак — 25—30 %, обед — 45—50 %, ужин — 20—25 %. Время между завтраком и обедом, обедом и ужином должно составлять 5—6 ч, между ужином и отходом ко сну — 3—4 ч. Эти периоды предусматривают высоту активности пищеварительных функций, переваривание и всасывание основного количества принятой пищи. Более рационально 5 — 6-разовое питание. При 5-разовом питании на первый завтрак должно приходиться около 25 % калорий суточного рациона, на второй завтрак — 5—10 % (легкая закуска — фрукты, чай), на обед — около 35 %, на полдник — 25 %, на ужин — 10 %. При 4-разовом приеме пищи на первый завтрак должно приходиться 20—25%, на второй завтрак — 10—15 %, на обед —35—45%, на ужин — 20—25 % калорий суточного рациона.

 

21 Принципы составления пищевого рациона. Цель составления пищевого рациона – подсчитать общую калорийность пищевого рациона за сутки с последующим соспоставлением его с энергозатратами организма, что позволит выяснить, покрывает ли пищевой рацион энергозатраты. Пищевой рацион составляется испытуемым за прошедший день, пользуясь специальными таблицами калорийности продуктов. При составлении пищевого рациона необходимо руководствоваться следующим: в пищевом рационе должно содержаться оптимальная для людей данного вида труда количество белков, жиров и углеводов; калорийность пищевого рациона должна покрывать суточный расход энергии; в пищевой рацион должны входить витамины, минеральные соли, вода.

 

23) ОБЩИЙ АНАЛИЗ МОЧИ

Для качественного исследования мочи необходимо собрать ее утреннюю порцию. Общее представление о характере мочи дает определение прозрачности, цвета, запаха, реакции и pH, относительной плотности, наличия белка, лейкоцитов, эритроцитов, цилиндров, клеток эпителия, солей (уратов, оксалатов, фосфатов) и др.
Прозрачность. Определяется путем осмотра мочи, помещенной в пробирку или цилиндр из прозрачного стекла в проходящем свете. Нормальная моча прозрачна. При длительном стоянии в ней может образоваться облачко слизи.
Мутной моча бывает при содержании в ней солей, большого количества слизи, клеточных элементов, бактерий или липидов. Причину помутнения мочи можно выяснить при микроскопическом исследовании ее осадка или химическим анализом.
Для исчезновения мути при содержании в моче большого количества уратов (уратурии) достаточно 2—3 мл налитой в пробирку мочи подогреть на спиртовке. При фосфатурии моча становится прозрачной, если после подогревания добавить в нее несколько капель ускусной кислоты. Если при добавлении кислоты исчезновение мути сопровождается шипением, значит причиной се было наличие в моче карбонатов. При содержании в моче большого количества оксалатов (оксалурии) муть исчезнет с добавлением разведенной соляной кислоты. Муть, обусловленная присутствием в моче кристаллов мочевой кислоты, исчезает при добавлении к моче крепкого раствора калиевой щелочи. Мутность может быть вызвана содержанием в моче липидов (липурия). Такое помутнение исчезает при добавлении к 2—3 мл мочи эфира.

Цвет. Определяется путем осмотра мочи в отраженном и проходящем свете. В норме у новорожденного моча почти бесцветная. На 2—3-й день после рождения она становится янтарно-коричневой, что связано с выделением большого количества уратов. У детей младшего возраста цвет мочи соломенно-желтый, в более старшем возрасте окраска ее меняется от соломенно- до янтарно-желтой. Нормальная окраска мочи зависит от присутствия в ней урохрома.
Более интенсивно может быть окрашена моча (гиперхромурия) при заболеваниях печени, сердца, гемолитических состояниях, гипертиреоидизме, а также при состояниях, ведущих к уменьшению количества мочи (лихорадка, рвота, понос, усиленное потоотделение, токсикоз и др.). Слабо-окрашенная моча (гипохромурия) характерна для полиурии, наблюдающейся при хронической почечной недостаточности, сахарном и несахарном диабете и др. Красный и розово-красный цвет мочи отмечается при гематурии и гемоглобинурии, порфиринурии; зеленый — при резко выраженной желтухе; коричневый — при билирубинурии, метгемоглобинурии, порфиринурии; молочно-белый — при липурии; темный во время стояния на воздухе — при алкаптонурии.
Запах. В норме моча издает слабо ароматический запах, обусловленный содержанием в ней летучих жирных кислот и других веществ. Более резкий запах связан с наличием в моче уриноида. При диабете из-за содержания ацетона в моче ощущается запах гнилых яблок. При аммиачном разложении мочи от нее исходит запах аммиака. На характер запаха влияет содержание выделяющихся с мочой лекарственных веществ.
Реакция мочи. При общем анализе реакция мочи ориентировочно определяется с помощью лакмусовых бумажек. Для определения реакции берется только свежая моча. При стоянии мочи из нее выделяется СО2 и pH сдвигается в щелочную сторону. Для решения вопроса о реакции мочи пользуются одновременно двумя видами лакмусовой бумажки — синей и красной. Как отмечает И. Тодоров, при этом могут быть получены следующие результаты:

1. Синяя лакмусовая бумажка краснеет, красная не изменяет цвета — кислая реакция.
2. Красная лакмусовая бумажка синеет, синяя не изменяет цвета — щелочная реакция.
3. Оба вида бумажки не изменяют цвета — нейтральная реакция.
4. Оба вида бумажки меняют цвет — амфотерная реакция. Более точно pH можно определить с помощью электрометрического рН-метра.

Кислотность мочи у детей повышается при почечной недостаточности, диабете, туберкулезе почек, лейкемии и других заболеваниях, ведущих к ацидозу. Сдвиг реакции мочи в сторону щелочности отмечается при рвоте (в связи с потерей ионов хлора), при рассасывании отеков, растительной пище и состояниях, ведущих к развитию в организме алкалоза.
Относительная плотность. Определяется специальными ареометрами, называемыми урометрами. На шкале урометра нанесены деления от 1,000 до 1,060. На урометре указывается также, на какую внешнюю температуру окружающей среды рассчитана градуировка. Обычно это 15 °С. Если температура исследуемой мочи не совпадает с температурой, на которую рассчитан урометр, после измерения относительной плотности делают поправку: на каждые 3 °С прибавляют или вычитают 0,001 в зависимости от того, выше или ниже 15 °С температура мочи.
Для определения относительной плотности мочу медленно наливают в узкий цилиндр, не вызывая образования пены. Цилиндр устанавливают строго вертикально на устойчивый стол и в мочу осторожно погружают урометр. Когда погружение урометра заканчивается, его легонько подталкивают сверху, но так, чтобы остающаяся над жидкостью часть была сухой. После прекращения колебаний урометра отмечают относительную плотность мочи по делению на шкале урометра, совпадающему с нижним мениском.
При наличии в моче сахара или белка для получения окончательного значения относительной плотности необходимо сделать поправку. Каждый процент сахара увеличивает плотность мочи на 0,004, а каждые 3 % белка — на 0,001. Так, если содержание белка в моче превышает 3%, из полученной относительной плотности мочи вычитают поправку на основании следующих данных:

концентрация белка, %	поправка
до 3
4—7	0,001
8—11	0,002
11 — 15	0,003
16—19	0,004
	0,005

Определение относительной плотности мочи с помощью ареометров — довольно простой и достаточно точный для практических целей метод. Однако у детей, особенно раннего возраста, не всегда удается собрать нужное количество мочи, с тем чтобы в нее можно было погрузить ареометр. В таких случаях прибегают к разведению мочи дистиллированной водой в два — три раза и установленный показатель относительной плотност