Гонококки по своей форме напоминают бобы или кофейные зёрна, расположенные попарно, вогнутыми сторонами внутрь. Размеры возбудителя колеблются в среднем от 0,7 до 1,3 мкм. В гнойном отделяемом человека эти микроорганизмы локализуются в цитоплазме лейкоцитов, где долго сохраняют свою жизнеспособность (незавершённый фагоцитоз). На культуральных средах гонококки располагаются беспорядочно, имеют разные размеры и круглую или бобовидную форму.
Гонококки относятся к грамотрицательным бактериям и поддаются окрашиванию всеми анилиновыми красителями. При бактериоскопическом исследовании выделяется характерная триада свойств, отличающая гонококки от других диплококков: грамотрицательная окраска (окрашивание в красный цвет по методу Грамма), бобовидная форма и внутриклеточное расположение.
Необходимо отметить, что под воздействием лекарственных препаратов, а также при хронической форме заболевания, микроорганизмы могут видоизменяться. В этом случае в мазках наряду с грамотрицательными возбудителями встречаются грамположительные бактерии разной величины и формы (шаровидные L-формы гонококка).
Гонококки – это ээробные микроорганизмы, образующие в патологическом отделяемом слизистое капсулоподобное вещество. Чаще всего они расположены скоплениями, напоминающими пчелиный рой.
Возбудители требовательны к питательным средам. Они хорошо растут при достаточной влажности на средах, содержащих в своём составе нативный белок.
При разрушении клетки гонококки выделяют эндотоксин, экзотоксина не образуют.
Механизм развития эндотоксического шока при менингите менингококковой этиологии
В основе механизма развития эндотоксического шока при менингококцемии лежат нарушения гемодинамики, микроциркуляции, вызывающие гипоксию. Нарушение свертываемости крови (феномен повышенной впутрисосудистой коагуляции) приводит к образованию множества мельчайших тромбов. Возникновение кровоизлияний во внутренних органах обусловлено истощением факторов свертывания (коагулопатия потребления). Частое поражение надпочечников связывают с повышенным кровенаполнением этих органов. Полагают, что основным механизмом развития шока является генерализованная анафилактическая реакция.
Микробиологическая диагностика менингококкового назофарингита
Микробиологическая диагностика: Материал для исследования - кровь, спинномозговая жидкость, носоглоточные смывы.
Бактериоскопический метод – окраска мазков из ликвора и крови по Граму для определения лейкоцитарной формулы, выявления менингококков и их количества. Наблюдают полинуклеарные лейкоциты, эритроциты, нити фибрина, менингококки – грам«-», окружены капсулой.
Бактериологический метод – выделение чистой культуры. Носоглоточная слизь, кровь, ликвор. Посев на плотные, полужидкие питательные среды, содержащие сыворотку, кровь. Культуры инкубируют в течение 20 ч. При 37С с повышенным содержанием СО2. Оксидазаположительные колонии – принадлежат в данному виду. Наличие N.meningitidis подтверждают образованием уксусной кислоты при ферментации глюк. и мальтозы. Принадлежность к серогруппам – в реакции агглютинации (РА).
Серологический метод – используют для обнаружения растворимых бактериальных АГ в ликворе, или АТ в сыворотке крови. Для обнаружения АГ применяют ИФА, РИА. У больных, перенесших менингококк – в сыворотке специфические АТ: бактерицидные, агглютинины, гемагглютинины.
Лечение. В качестве этиотропной терапии используют антибиотики - бензилпенициллин (пенициллины, левомицетин, рифампицин), сульфамиды.
Профилактика. Специфическую профилактику проводят менингококковой химической полисахаридной вакциной серогруппы А и дивакциной серогрупп А и С по эпидемическим показаниям. Неспецифическая профилактика сводится к соблюдению санитарно-противоэпидемического режима в дошкольных, школьных учреждениях и местах постоянного скопления людей.
Микробиологическая диагностика гнойной раневой инфекции
Материалом служит раневое отделяемое, кусочки тканей, смывы или отпечатки с поверхности раны. Материал забирается в стерильных условиях и стерильными инструментами. Раневое отделяемое или смывы с поверхности раны забираются в пробирки (8-10 мл), флаконы или направляются в шприце с загерметизированной иглой (игла вкалывается в стерильную пробку). При малом количестве отделяемого его помещают в пробирки со стандартной средой (СКС-199), обеспечивающей сохранность аэробных и анаэробных микроорганизмов. Кусочки тканей (биоптаты) также помещаются в пробирки со средой СКС-199. Одновременно с забором материала в обязательном порядке готовят не менее 2 мазков, которые окрашивают по Граму в целях ориентировочной экспресс-диагностики. Обнаруженные при микроскопии микроорганизмы разделяют на группы: грамположительные и грамотрицательные кокки, грамположительные и грамотрицательные палочки. Учитываются также особенности морфологии микробиотов (величина клеток, наличие спор или капсул, тенденция к образованию цепочек и т. д.), что позволяет иидентифицировать отдельные виды микробиота по характерным признакам. Результаты нативной бактериоскопии помогают в назначении первичной эмпирической антибактериальной терапии. Посевы материалов осуществляют согласно строго регламентированной типовой схеме в течение первых часов после забора. Изучение культуральных и морфологических свойств выросших колоний оценивают визуально (лучше с помощью стереоскопического микроскопа) через 24-48 ч. Как правило, осуществляют пересев отдельных колоний на специализированные среды. Затем проводят идентификацию штаммов на основе биохимического обнаружения специфических маркеров — ферментов или типовых метаболитов. Окончательную идентификацию возбудителей и определение их чувствительности к антибактериальным препаратам проводят после получения чистой культуры. В крупных лечебных учреждениях могут использоваться ускоренные методы идентификации возбудителей раневой инфекции с помощью систем мультимикротестов ENTERO-SERREN и др., позволяющих сократить сроки бактериологических исследований до 4-6 ч. В стадии изучения клинической эффективности находятся высокотехнологичные методы идентификации доминирующих в микробной ассоциации возбудителей, независимо от их количественного содержания. К таким методам относится, к примеру, газовая хроматография, позволяющая распознать характерные метаболиты отдельных микробиотов, которые по своим микробиологическим свойствам способны выступить в качестве доминирующих патогенов. Сюда же следует отнести современные методы генетического анализа с использованием искусственной полимеразном цепной реакции (ПЦР)